Stomach Health > Желудок Здоровье >  > Gastric Cancer > Рак желудка

PLoS ONE: Гипоксия-Индуцибельная фактор 1α Определяет рак желудка химиочувствительность с помощью модуляции р53 и NF-kB

Абстрактный

Фон
<р> Снижение химиочувствительность твердых раковых клеток представляет собой стержневую препятствие в клинической онкологии. Следовательно, молекулярная характеристика путей, регулирующих химиочувствительность является центральным условием для улучшения терапии рака. Гипоксия-индуцируемый фактор HIF-1α был связан с химиочувствительность в то время как базовые молекулярные механизмы остаются в значительной степени недостижимой. Поэтому мы всесторонне проанализировали роль HIF-1 в определении химиочувствительность с акцентом на ответственных молекулярных путей.

Методология и основные выводы
<р> РНК-интерференции был применен для инактивации HIF-1 или р53 в раке желудка человека клеточные линии AGS и MKN28. Химиотерапевтические средства, 5-фторурацил и цисплатин использовались и чувствительность к химиотерапевтическим препаратам оценивали с помощью анализа пролиферации клеток, а также определения распределения клеточного цикла и апоптоза. Экспрессия р53 и р53-мишеней белков анализировали с помощью вестерн-блоттинга. активность NF-kB характеризовался с помощью методом сдвига электрофоретической подвижности. Инактивация HIF-1 в клетках рака желудка приводит к надежной высоте химиочувствительность. Соответственно, HIF-1-компетентные клетки продемонстрировали значительное снижение вызванной химиотерапией старении и апоптоза. Примечательно, что этот фенотип был полностью отсутствует в P53
мутантных клеток в то время как инактивация р53 сами по себе
не влияет на химиочувствительность. HIF-1α в значительной степени подавлено вызванной химиотерапией активацию р53 и р21, а также белок ретинобластомы, в конечном итоге приводит к остановке клеточного цикла. Уменьшенный образование активных форм кислорода в HIF-1α-компетентных клеток был идентифицирован как молекулярный механизм HIF-1α-опосредованного ингибирования р53. Кроме того, утрата HIF-1 аннулирована, в р53-зависимым образом, вызванной химиотерапией ДНК-связывание NF-kB и экспрессию антиапоптотических NF-kB генов-мишеней. Соответственно, восстановление субъединиц р65 NF-kB отменила повышенную химиочувствительность HIF-1-дефицитных клеток.

Заключение и значение

Таким образом, мы определили HIF-1 в качестве мощного регулятора p53 и NF-kB активность в условиях генотоксического стресса. Мы пришли к выводу, что p53
мутации в опухолях человека обладают потенциалом, чтобы посрамить эффективность HIF-1-ингибиторов при лечении рака
<р> Цитирование:. Rohwer N, C-Дам, Haugstetter A, B Wiedenmann , Detjen K, Шмитт CA и др. (2010) Гипоксия-Индуцибельная фактор 1α Определяет Рак желудка химиочувствительность с помощью модуляции р53 и NF-kB. PLoS ONE 5 (8): e12038. DOI: 10.1371 /journal.pone.0012038
<р> Редактор: Деб Фокс, Научно-исследовательский институт по делам детей в детской больнице Нью-Орлеан, Соединенные Штаты Америки
<р> Поступило: 28 апреля 2010 года; Принято: 19 июля 2010 года; Опубликовано: 10 августа, 2010 года
<р> Copyright: © 2010 Ровер и др. Это статья с открытым доступом распространяется в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution, которая позволяет неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе, при условии, что оригинальный автор и источник кредитуются

Финансирование:. Это исследование была поддержана грантами от Deutsche Forschungsgemeinschaft (http://www.dfg.de) в TC (CR 133 /2-1, 133 /2-2 и 133 /2-3), и NR (Graduiertenkolleg 276/4 - "Signalerkennung унд -umsetzung"). TC также был поддержан грантом Berliner Krebsgesellschaft Э.В. (Http://www.berliner-krebsgesellschaft.de, CRFF200804). Доноры не играет никакой роли в дизайн исследования, сбора и анализа данных, решение о публикации или подготовки рукописи
<р> Конкурирующие интересы:.. Авторы заявили, что не существует никаких конкурирующих интересов

Введение
<р> искробезопасности и приобрели резистентность к лекарственным средствам являются основными причинами для ограниченной эффективности химиотерапии у большинства желудочно-кишечных злокачественных опухолей, включая рак желудка [1], [2]. Лекарственная устойчивость представляет собой сложный и многофакторный феномен, связанный с опухолью микросреды, например гипоксия, ацидоз и воспаление, а также сама неопластическая клетка [3]. Клеточный сопротивление может быть присуще конкретного генетического фона клетки опухоли или в результате мутаций и эпигенетических изменений после антипролиферативным терапии [4], [5].
<Р> транскрипционный фактор индуцированного гипоксией фактор 1 (HIF-1 ) представляет собой стержневую регулятор клеточной адаптации к гипоксии и участвует в лекарственной устойчивости [6] - [8]. HIF-1 белок представляет собой гетеродимер, состоящий из экспрессирован -субъединицы (ARNT (арилуглеводородному Рецептор ядерный транслокатор)) и гипоксия-индуцируемых α-субъединица [9]. В соответствии с гипоксическим условиям, HIF-1α активность может быть вызвана различными факторами роста, цитокины, активированные онкогены или с потерей функции мутировали генов-супрессоров опухолей [10]. HIF-1α является центральным участником в нескольких аспектах онкогенеза, включая пролиферацию опухолевых клеток, ангиогенеза, метастаз, а также реакции на химио- и лучевой терапией [11]. HIF-1α избыточно экспрессируется в огромном количестве солидных опухолей, и экспрессия опухолевыми HIF-1α часто ассоциируется с плохим прогнозом [12] - [15]. Кроме того, ингибирование HIF-1 с помощью РНК-интерференции или фармакологических соединений доказало противоопухолевая эффективность в различных мышиных моделях рака [16]. Вклад HIF-1 в химиорезистентности опухолевых клеток наблюдается в широком спектре солидных опухолей, включая рак желудка [6] - [8], [17] - [20]. Тем не менее, лежащие в основе молекулярные механизмы, а также роль HIF-1 для лекарственной устойчивости при нормоксических условиях остаются в значительной степени недостижимой [8], [18], [21]. Здесь мы идентифицируем подавление р53 и продвижение ядерного фактора активности кВ (NF-kB) в качестве центральных механизмов HIF-1α-х чувствительность-определяющую роль в отношении 5-фторурацил (5-ФУ) и цисплатин в раковых клетках желудка человека.


Результаты

HIF-1α определяет чувствительность клеток рака желудка в сторону химиотерапевтических агентов 5-ФУ и цисплатин
<р> Функциональная инактивация HIF-1 была достигнута путем лентивирусов трансдукции и AGS MKN28 клетки с малых интерферирующих РНК (миРНК) специфически ориентации HIF-1. Этот экспериментальный подход привел к высокоэффективную нокдаун, продемонстрированные почти полного отказа трансдуцированных клеток индуцировать HIF-1α белка в ответ на гипоксию, опубликованной ранее [22]. Для того, чтобы оценить важность HIF-1 для чувствительности клеток рака желудка человека по отношению к установленным химиотерапевтических агентов, мы сравнили эффекты 5-ФУ и цисплатин в HIF-1α-компетентной (закодированная, "SCR") и HIF-1-дефицитных (нокдаун, "KD") AGS клетки. Функциональная инактивация HIF-1 сдвинуты зависимость от дозы ингибирования роста в сторону более низких концентраций препарата (рис 1А и фиг S1), предполагая, что HIF-1α способна уменьшить химиотерапией восприимчивость клеток рака желудка при нормоксических условиях. В соответствии с предыдущими отчетами [6] - [8], [17], [18], воздействие гипоксии повышенную устойчивость к 5-ФУ в AGS клетках, однако инактивация HIF-1 приводит в надежной высоте химиочувствительность в условиях гипоксии ( Рисунок S2). В дополнительный подход, мы изучали последствия гиперэкспрессией HIF-1 (pcDNA HIF-1) для химиочувствительность клеток AGS. AGS клетки избыточно экспрессирующие HIF-1, были значительно более устойчивы к лечению с 5-ФУ (рис 1б). Стабильная экспрессия HIF-1α была подтверждена HRE (гипоксия отзывчивым элемент) люциферазы репортер анализа (рис 1C). Эти результаты убедительно показывают, что HIF-1α ограничивает цитотоксическое действие 5-ФУ и цисплатин в раковых клетках желудка человека и что инактивация HIF-1 может оказывать благотворное влияние на химиочувствительность.

HIF-1α пределы вызванной химиотерапией арест клеточного цикла и апоптоз путем подавления р53
<р> Мы начали характеристику наблюдаемого ингибирования роста путем анализа закономерностей распределения клеточного цикла после химиотерапии. G <суб> 1-синхронизированный, с недостатком сыворотки AGS клетки были освобождены из G <суб> 0 /G <суб> 1 фаза путем добавления сыворотки и клеточного цикла профили были определены после добавления 5-ФУ. Освобожденные культуры необработанных AGS легко прогрессировали через G <югу> 1 в S и G <суб> 2 /M фазы [22], в то время как 5-FU-обработанные клетки оставались в G <югу> 1 фаза (не показан). Интересно отметить, что 5-FU-зависимой удерживание клеток в G <югу> 1 фаза была значительно увеличена в AGS КД по сравнению с клетками АГС SCR, в соответствии с G <суб> 1 клеточного цикла (рисунок 2А). Необратимые арест клеточного цикла возник в качестве важного способа действия антипролиферативным агентов и характеризуется особенностями клеточных старении [7], [23]. Соответственно, доля стареющих клеток определяли. Действительно, лечение с 5-ФУ привело к надежной индукции старении в AGS клетках. Этот ответ был значительно усиливается в клетках с одновременной потерей HIF-1 (Фигура 2В). Кроме того, индукция апоптоза была предложена увеличенной предварительной G <югу> 1 фракции в гистограмм ДНК 5-FU-обработанных клеток АГС КД (не показан). Таким образом, количественный анализ фракции клеток путем апоптоза была получена на основании обнаружения расщепленной каспазы-3 (фиг.2с). В соответствии с данными о распределении клеточного цикла, 5-FU-индуцированной апоптическая фракция была значительно увеличена в HIF-1α-дефицитных клеток AGS KD по сравнению с HIF-1-компетентных клеток.
<Р> Химиотерапия индуцированных Старение и апоптоз оба были тесно связаны с опухолью супрессора p53
. Таким образом, мы предположили, что p53 может способствовать дополненной цитотоксичность 5-ФУ при потере HIF-1. После обработки 5-ФУ, белок р53 постепенно накапливается в клетках AGS, эффект, который был поразительно усиливается в HIF-1-дефицитных AGS клеток (рис 2D). Эта стабилизация р53 была связана с повышенным уровнем циклин-зависимой киназы (CDK) ингибиторов p21, хорошо организованной транскрипционной мишени и нижестоящим эффектором p53 с функциями в остановке клеточного цикла, увядания и индукции апоптоза (рис 2D). Опять же, HIF-1-дефицитных AGS клетки показали заметно более сильное увеличение p21, чем HIF-1-опытным AGS клеток. Сильная индукция р21, как ожидается, ингибируют активность G <суб> 1 циклин /CDK комплексы, что приводит к гипофосфорилирование белка ретинобластомы (PRB) и неспособность индуцировать фазовые циклины S, например, циклин А. В самом деле, как PRB гипофосфорилирование и пониженные уровни циклин А, были подтверждены в 5-FU-обработанных клеток АГС KD и - в меньшей степени - также в AGS SCR-клетки (рис 2D). Эти изменения подтверждают сохранение G <югу> 1 фазы наблюдается в гистограмм ДНК и совместимы с необратимой G <югу> 1 ареста наблюдается в химиотерапии индуцированных старении. Таким образом, различные биологические результаты лечения 5-ФУ в HIF-1α-дефицитных и -proficient AGS клетки возникают из-дифференциального регулирования р53 и его вниз по течению мишени р21.

Инактивация р53 притупляет роль HIF-1 для химиочувствительность
<р> Чтобы получить экспериментальные доказательства предложенной роли р53 в HIF-1-опосредованной регуляции химиочувствительность в клетках AGS, мы функционально инактивируют р53 путем РНК-интерференции с использованием временной трансфекции анти-p53 миРНК (Si p53) или вскарабкался контроль миРНК (си ЮКЖД). Р53 был эффективно нокдауне, как показано неспособностью трансфицированных клеток, чтобы индуцировать р53 эффекторы р21 и MDM2 в ответ на 5-FU обработки (фиг.3А). Интересно отметить, что АГС KD клетки, трансфицированные си p53 были значительно менее чувствительны к ингибированию роста 5-ФУ, чем клетки АГС KD, трансфицированных контрольной миРНК (рис 3б). В соответствии с этими выводами, G цикл удержания <суб> 1 клеток и апоптоз 5-FU-обработанных клеток АГС KD были снижены на р53 нокдауна по сравнению с клетками, трансфицированных контрольной миРНК (на фиг.3D и 3Е). В резком контрасте, химиочувствительность HIF-1-опытным AGS клетки не находился под влиянием инактивации р53 (рис 3C).

HIF-1α не в состоянии повлиять на химиочувствительность в P53
мутантных клеток <бр>

для подтверждения HIF-1-зависимой регуляции 5-FU отзывчивости и далее характеризуют вклад р53, мы исследовали второй желудка человека линии клеток рака (MKN28), который несет мутацию миссенс в TP53
в кодоне 251. Интересно, что удаление HIF-1 в клетках MKN28 не удалось улучшить торможение роста после воздействия 5-ФУ (рис 4а). Аналогичным образом, 5-FU-индуцированное G <югу> 1 накопление и апоптоз клеток MKN28 не были затронуты потерей HIF-1 (рис 4В и 4С). В соответствии с этими выводами, уровни белка р53 и PRB остались без изменений в 5-FU-обработанных клеток MKN28 в течение всего 24-часового периода, и p21 индукция отсутствовал (рис 4D). Однако, когда функция р53 была восстановлена ​​путем предварительной обработки с химическим соединением ПРИМА-1 [24] HIF-1α нокдаун транслируется в значительно расширенной 5-FU цитотоксичности (рис S3). В соответствии с установленной ролью p53 в химиотерапии индуцированных цитотоксических /цитостатических эффекты, лечение с PRIMA-1 по себе
слегка уменьшил пролиферацию клеток MKN28 и позволило существенно повысить эффективность 5-ФУ в MKN28 клетках (рис S3).

NF-kB является важным медиатором роли HIF-1 в химиочувствительность
<р> Активация NF-kB, связанного с защитой от химиотерапии-индуцированного апоптоза и, наоборот, ингибирование NF -κB может повысить эффективность противоопухолевых средств и в естественных условиях
и в пробирке
[25] - [27]. Таким образом, мы определили NF-kB ДНК-связывающей активностью в HIF-1α-дефицитных и -proficient AGS клеток после обработки 5-ФУ путем методом сдвига электрофоретической подвижности (EMSA). Лечение с 5-ФУ сильнодействующий активированный NF-kB ДНК-связывающая в клетках АГС SCR, с пиковые уровни происходит через 6 ч после воздействия 5-ФУ (рис 5А). Лечение с помощью TNF α в течение 4 ч служил в качестве положительного контроля для активации NF-kB. Кроме того, supershift индуцировали анти-p65 антителом, подтверждая, что 5-ФУ, индуцируемые NF-кВ комплексы содержали субъединицу 65-кДа (р65). Потеря HIF-1 значительно ингибирует активацию NF-kB в ответ на 5-ФУ и TNF α (рис 5А). В соответствии с этим наблюдением, 5-ФУ лечение также не индуцируют генов-мишеней NF-kB и A20 cIAP1 в клетках AGS КД, в то время как они были легко индуцируется в клетках AGS SCR (Рисунок 5б)
. <Р> Для решения этой функциональное значение NF-kB для 5-FU-индуцированного ингибирования роста, мы гиперэкспрессия p65 (pcDNA P65) в клетках AGS KD. Трансфекция pcDNA р65, но не вектор управления пустым, привело к значительному индукции р65 белка и транскрипционной активности NF-kB в клетках АГС KD (рис S4). Следует отметить, что HIF-1-дефицитных AGS KD клетки сверхэкспрессией p65 были значительными более устойчивы к лечению 5-FU по сравнению с клетками AGS KD, трансфицированных контрольным вектором (5С), в соответствии с существенной роли NF-kB в опосредовании химическую устойчивость по отношению к 5-ФУ в клеток рака желудка. Взятые вместе, параллельную активацию р53 и ингибирование NF-kB в 5-ФУ лечение, наблюдалась HIF-1-дефицитных AGS клетки. Для того, чтобы уточнить, является ли оба события являются взаимозависимыми, мы исследовали 5-FU-индуцированной активации NF-кВ в MKN28 клетках с мутантом p53.
И 5-ФУ и TNF-alpha активированный NF-kB ДНК-связывающий в Time- зависимым образом, указывая р53-независимые механизмы активации NF-kB с помощью 5-ФУ (рис 5D). Тем не менее, отличается от нахождения в AGS клетках, эта активация NF-kB в <ЕМ> P53
мутант клеточная линия не была притупляется HIF-1α инактивацией. Таким образом, HIF-1α может поддерживать вызванной химиотерапией активацию NF-кВ, противодействуя ингибирующие механизмы р53-зависимой.

Altered образование ROS отвечает за HIF-1α-индуцированной модификации активности р53
<р> Для прояснить механизм, лежащий p53 superinduction молекулярный в 5-FU обработанных HIF-1α-дефицитных клеток, мы охарактеризовали роль активных форм кислорода (АФК). РОС образуют связь кандидата как (I) РОС являются мощными активаторами функции P53 и считаются ключевыми факторами при индукции р53 различных химиотерапевтических агентов [28], и (II), HIF-1α может подавлять образование активных форм кислорода за счет уменьшения активности митохондрий и биогенеза [22], [29], [30]. Соответственно, клетки AGS КД подвергают предварительной обработке с хлоридом РОС-ингибиторы diphenyleneiodonium (DPI) или апоцинин. Оба ингибитора присвоил значительную защиту от 5-FU-индуцированного ингибирования роста в клетках AGS KD (рис 6A и 6B). Кроме того, DPI и апоцинин почти полностью предотвратить индукцию р53 и его вниз по течению мишени p21 в 5-FU-обработанных клеток (рис 6С и 6D). Эти результаты указывают на пересечение сигналов HIF-1 с p53-опосредованной реакции на 5-ФУ на уровне производства ROS. Для того, чтобы установить причинную роль HIF-1 для окислительно-восстановительного потенциала AGS клеток после обработки 5-ФУ, внутриклеточные уровни ROS были определены в AGS КД и SCR клеток с помощью проточной цитометрии. Мы обнаружили, что внутриклеточные уровни супероксид в 5-FU-обработанных клеток АГС кД в 2,5 раза выше, чем в 5-FU-обработанных клеток АГС SCR (Рисунок S5), указывая, что функциональная инактивация HIF-1 в клетках AGS привело значительное и функциональное повышение внутриклеточного окислительного стресса даже при химиотерапевтического лечения

Обсуждение
<р> транскрипционный фактор HIF-1α был создан в качестве важного посредника гипоксией опосредованной химиорезистентности [6] - [8]. , [17], [18], [20]. Здесь мы определяем HIF-1 в качестве мощного определителя химиочувствительность в раковых клетках желудка при нормоксических условиях. Применяя лентивирус на основе системы миРНК мы показывают значительно улучшена 5-ФУ и цисплатин токсичность в HIF-1-дефицитных клеток рака желудка. Имеющиеся данные о роли HIF-1 для химиочувствительность раковых клеток при нормоксических условиях противоречивы. В то время как HIF-1-дефицитных клеток саркомы (НТ1080) отображаемую значительно повышена чувствительность к этопозид при атмосферном воздухе, рак толстой кишки (НСТ116) и гепатомы (Гепа-1) клетки не в состоянии сделать это [6]. Унрух <ЕМ> и др.
Сообщили повышенную восприимчивость HIF-1-дефицитных мышиных эмбриональных фибробластов карбоплатин или этопозид под нормоксических, а также гипоксических состояний [8]. Что касается рака желудка, повышенная эффективность 5-ФУ и винкристин было продемонстрировано при нормоксии в пробирке
[18]. Ну в соответствии с нашими результатами, оба исследования пришли к выводу, решающую роль для HIF-1 в опосредовании химическую устойчивость при нормоксических условиях. Интересно, что недавнее исследование, проведенное в Японии продемонстрировали низкую эффективность 5-ФУ на основе химиотерапии в HIF-1, экспрессирующих желудка аденокарциномы человека, усиливая восприятие HIF-1, как ключевой фактор при определении желудка химиорезистентности рака [31].
<р> Контроль прогрессирования рака химиотерапией зависит, по меньшей мере, частично на индукцию клеточного старения. В последнее время потеря HIF-1 было показано, чтобы вызвать преждевременное старение увековечены мышиных эмбриональных фибробластов под нормоксических условиях [32]. Наши текущие данные свидетельствуют о том, что HIF-1α аналогично оберегает желудочные раковые клетки против химиотерапии индуцированных старении при нормоксических условиях. Это представляет собой первый доклад повышенной вызванной химиотерапией старении с помощью функциональной инактивации HIF-1 в установленной линии раковых клеток человека. В HIF-1-дефицитных клеток, мы также наблюдали улучшилось индукции апоптоза в ответ на 5-ФУ. Предыдущие исследования сообщили о реактивации проапоптотической фактора торгов [6], либо изменение в балансе про- и антиапоптотических членов Bcl-2 семьи отчитаться о повышении уровня апоптоза после инактивации HIF-1 в клетках рака желудка наркотиков лечение [ ,,,0],. 18]
<р> Наше текущее исследование идентифицирует механизм нового, в результате чего HIF-1α противодействует как вызванной химиотерапией старение и апоптоз: Мы представляем убедительные доказательства способности HIF-1 для подавления индукции опухолевого супрессора р53 в ответ на 5-ФУ при нормоксических условиях. Р53 является ключевым фактором, определяющим судьбу клеток из-за его роли в регулировании ход клеточного цикла и апоптоза в ответ на клеточный стресс и представляет собой наиболее часто мутантный ген в злокачественных опухолях человека [33]. Широкое разнообразие химиотерапевтических агентов было показано, что стабилизировать P53 и, наоборот, утрата р53 является принцип механизм устойчивости рака по отношению к химиотерапии [33], [34]. Взаимодействие р53 и HIF-1 был предметом дискуссий многолетними, как и положительные и отрицательные отчеты были опубликованы [35]. Тем не менее, вся ранее опубликованная работа сосредоточена на p53-HIF-1-взаимодействиях при гипоксических (или даже бескислородных) условиях. Насколько нам известно, наши эксперименты впервые представить доказательства для подавления активности р53 по HIF-1 при нормоксических условиях. Как следствие р53 повышающую регуляцию в HIF-1-дефицитных клеток, мы наблюдали изменения в нижестоящих эффекторов, которые связаны с необратимой клеточного цикла характеристики старении, например, Стабилизация р21 и гипофосфорилирование PRB. В отличие от нашего наблюдения, недавняя работа на химиорезистентности направлении этопозид в HIF-1α-дефицитных увековечены мышиных эмбриональных фибробластов не наблюдали индукцию р21 [36]. Кроме того, HIF-1α стабилизировались p21 и p27, а также привело к гипофосфорилирование PRB при гипоксии, вызванной арестом роста иммортализованных мышиных эмбриональных фибробластов и первичных селезеночных В-лимфоцитов [37]. Эти контрастные результаты, скорее всего, объясняется исследованных типов клеток: В то время как Goda и др
. характеризуется физиологической реакции на гипоксию в нетрансформированных типах клеток, мы проанализировали ответ на серьезные повреждения ДНК в установленных линий раковых клеток.
<р> В то время как p53 неоднократно показано, что противодействовать функции NF-кВ [38], [39 ], наши текущие данные указывают на роль опухолевого супрессора в регуляции HIF-1-зависимой активации NF-kB. Помимо p53, NF-kB стала второй, центральной детерминанта устойчивости к химиотерапевтических агентов [40]. Несколько различных исследований установили функциональные связи между NF-kB и HIF-1, хотя они переменно место HIF-1 либо вверх по течению от NF-kB, или наоборот. Например, гипоксия-индуцированный стабилизация HIF-1 в клетках гладких мышц находится под транскрипционным контролем NF-kB [41]. Аналогичным образом, результаты, полученные из условных нокаутных мышей ИКК-бета подтвердили ключевую роль NF-kB в управлении базальную и экспрессии гипоксия-индуцированный из HIF-1 В естественных условиях
[42]. И наоборот, экспрессия гена субъединицы р65 NF-kB была продемонстрирована контролироваться HIF-1 в контексте гипоксией подавлено апоптоз нейтрофилов [43]. Таким образом, наша находка заметно пониженной активности NF-kB в HIF-1-дефицитных клеток после обработки 5-ФУ хорошо в соответствии с этим последним докладом. Интересно, что мы также наблюдали значительное снижение ДНК связывание NF-kB в субъединиц HIF-1α-дефицитных клеток после стимуляции TNF α, хорошо известного индуктора активности NF-kB [44]. В этой связи возникает уместный вопрос, при которых физиологические и патофизиологические условия HIF-1α способен регулировать активацию NF-кВ. HIF-1α и NF-kB разделяют решающее значение для различных процессов, таких как воспаление, микробной убийства и онкогенеза. Точная молекулярная природа, а также иерархия их взаимодействия, скорее всего, и контекстно-Cell-зависящих и не может быть обобщен.
<Р> В настоящем исследовании мы смогли точно определить ROS как точки пересечения HIF- 1 α с p53-опосредованного клеточного ответа на стресс к химиотерапии. Внутриклеточные РОС известны как мощные индукторы р53 и участвуют в активации р53 химиотерапевтических препаратов [45]. Митохондрии представляют собой основной источник внутриклеточной ROS [46], и HIF-1α скорее противодействует производство ROS на митохондриальной уровне через множество механизмов, включая ингибирование митохондриального биогенеза и пирувата челночного в митохондрии, снижение активности митохондрий за счет более широкого применения гликолиза и активация митохондриального аутофагии [29], [30], [47], [48]. Ранее мы установили функциональную связь между HIF-1α-контролируемого восстановления ROS и анкерного независимости клеток рака желудка [22], вовлекая HIF-1 в патогенезе рака желудка при отсутствии гипоксии. Теперь мы находим, что capacitiy из HIF-1, чтобы ограничить ROS производство клеток рака желудка также придает устойчивость к химиотерапевтическим агентам, которые действуют через активацию р53 (рис 6E). Интересно отметить, что все большее влияние на резистентность к терапии с помощью модуляции р53 и ROS также сообщалось для HIF-2Л [49]. В HIF-альфа изоформы 1 и 2 показывают широкое перекрытие в предполагаемых мишеней HIF и связывание с гипоксических элементов ответа и определенное распределение гипоксией индуцированных эффектов для любой изоформы не всегда осуществимы [50]. Bertout и др.
Показано, что ингибирования HIF-2Л увеличивает радиационно-индуцированный апоптоз посредством накопления ROS и последующего увеличения активности р53 [49]. Кроме того, Робертс и др.
Показали, что устойчивость к химиотерапии частично опосредовано HIF-2α-опосредованной подавление p53 в клетках карциномы почечных клеток [51]. Следовательно, установленном настоящим Федеральным законом данные наблюдений заслуживают расследования потенциальной роли HIF-2Л, задача, которая в настоящее время в нашей лаборатории.
<Р> С учетом клинической необходимости выявления предикторов ответа доступных вариантов лечения, наш результаты могут потенциально прямые решения в отношении лечения: с одной стороны, знание HIF-1 сверхэкспрессии может направить на выбор лекарственных средств, которые в значительной степени действуют в p53-независимым образом. С другой стороны, особое преимущество может быть результатом сочетания HIF-1-ингибиторы и ДНК повреждающих агентов (например, 5-ФУ) в раковых заболеваний с функционального р53. И наоборот, снижается эффективность HIF-1-ингибиторов можно было бы ожидать для лечения р53 дефектных опухолей, аспект, который может представлять собой сбивающий фактор в клинических испытаниях HIF-1-ингибирующие режимы.

Материалы и методы лечения

культура клеток и химических веществ
<р> AGS (CRL-1739, АТСС, Роквилл, Мэриленд, США) и MKN28 (JCRB Cell Bank, Токио, Япония) выращивают в виде монослойных культур в стандартной среде , Генерация AGS и MKN28 клеток, стабильно экспрессирующих либо миРНК специфически ориентации HIF-1 (нокдаун, "KD") или неспецифическая управления миРНК (закодированная "SCR") была опубликована ранее [22]. 5-фторурацил (5-ФУ), цис-диаминплатины (II) дихлорид (цисплатин) и хлорид супероксидного анион-ингибиторы diphenyleneiodonium (DPI) и апоцинин были приобретены у Sigma-Aldrich (Германия) и растворяли в ДМСО. ПРИМА-1 (для р53-реактивации и индукции апоптоза массивным) получали из Tocris Biosciences (Ellisville, штат Миссури, США), и растворяли в стерильной воде. Контроль автомобилей растворителей была включена во всех экспериментах.

пролиферации клеток анализ
<р> Для определения клеточного роста, 3 × 10 4 клеток высевали в трех повторах в 24-луночные планшеты, позволяли закрепляться в течение 16 ч, а затем обрабатывали, как указано в нормоксических или гипоксических условиях. После обработки клетки обрабатывали трипсином и жизнеспособные клетки подсчитывали с использованием гемоцитометра.

Определение распределения клеточного цикла и апоптоза с помощью проточной цитометрии
<р> распределение клеточного цикла, включая пре-G <суб> 1 фракции определяют из гистограмм ДНК, как описано [52]. Апоптоз также количественному от обнаружения активных, расщепляется каспазы-3 с помощью проточной цитометрии с использованием Alexa Fluor® 488-конъюгированного антитела (Cell Signaling Technology, Danvers, штат Массачусетс, США).

Количественное старении
<р> β-галактозидазы Старение-ассоциированные оценивали в цитоспиновых препаратах, как описано [53].

иммуноблот анализ
<р> Цельные клеточные лизаты получали, как описано ранее [52], а затем разрешаться в 10% додецилсульфат натрия-полиакриламидном геле и переносили на нитроцеллюлозу (Amersham Biosciences, Freiburg, Германия). Блоты зондировали антителами против р53 и CDK2 (Santa Cruz Biotechnology, Санта-Крус, штат Калифорния, США), p21 (онкоген Research Products, Bad Soden, Германия), циклин A (Upstate, Temecula, Калифорния, США), PRB (BD Pharmingen , Heidelberg, Germany), MDM2 (Calbiochem, Сан-Диего, штат Калифорния, США), p65 (Cell Signaling Technology) и актина (Sigma-Aldrich). Вторичные антитела, конъюгированного с пероксидазой хрена (Дианова, Гамбург, Германия) и пероксидазной активности визуализировали с использованием западной Lightning хемилюминесценции Реагент Plus (Perkin Elmer Life Sciences, Бостон, Массачусетс, США).

Количественная ПЦР в реальном времени анализ

Для получения в режиме реального времени ПЦР-анализа, общая клеточная РНК экстрагировали реагентом Trizol (Invitrogen, Карлсруэ, Германия). Первую цепь кДНК синтезировали с олиго (дТ) праймера и первой системы SuperScript ™ Strand Synthesis (Invitrogen). Количественный анализ в реальном времени ПЦР проводили с использованием TaqMan PCR Универсальный Mastermix (для бета-актина) или SYBR Green PCR Master Mix (для A20 и cIAP1; Applied Biosystems, Дармштадт, Германия). Последовательности праймеров поставляются в таблице S1. Для того, чтобы нормализовать количество входных РНК, ПЦР-реакции проводили с зондом и праймеры для бета-актина.

Переходная трансфекция и репортер люциферазы анализа
<р> Переходные трансфекции AGS клеток проводили с использованием Effectene Трансфекция Реагент (Qiagen, Hilden, Germany) в соответствии с протоколом производителя. Для исследований избыточной экспрессии, клетки были высеяны на 3 × 10 4 клеток /24-хорошо и трансфицировали 100 нг pcDNA HIF-1 (любезно предоставленный Wanja Бернхардта, Universitätsklinikum Эрлангене, Эрланген, Германия) или pcDNA p65 (любезно предоставлены по Хироясу Накано, Jutendo университет, Токио, Япония), соответственно. Для HRE или люциферазы NF-kB, 3 × 10 4 клеток /24-луночного котрансфицируют со 100 нг pHRE-Luc (подарок от Randall С. Джонсон, UCSD, Сан-Диего, штат Калифорния, США) или IgκB-Люк (подарок от Florian R. Greten, Technische Universität München, München, Германия), и 30 нг phRL-нуль (Promega, Mannheim, Германия). Активность люциферазы измеряли с системой Dual люциферазы анализа (Promega), как описано [54]. Для достижения переходных процессов подавления р53, AGS клетки трансфицировали на 30% слияния с 75 или 150 нмоль /л си р53 ( Глушитель
Выбор миРНК, Applied Biosystems) и анализировали через 48 ч после трансфекции. Неспецифический миРНК (си ЮКЖД, Eurogentec, Серен, Бельгия) использовали в качестве контроля.

Электрофорезная сдвиг подвижности анализ (EMSA)
<р> Экстракты ядерный белок получали, как описано [54]. EMSA проводили, как описано ранее [55], используя 8 мкг ядерного белка и 100 фмоль /л конечного-метили 22 п.н. двухцепочечная NF-kB консенсус oligonucelotide (вперед нити: 5'-AGT ТГА GGG GAC ТТТ CCC AGG C- 3 '; E3292, Promega). Образцы были решены с помощью электрофореза на не денатурирующих 5% полиакриламидном геле.

Other Languages