Nuclear faktor apoptoza-inducirajući 1 (NAIF1) prethodno je uočeno da inducira apoptozu. Osim toga, ekspresija NAIF1 znatno podregulirani u ljudskim tkivima raka želuca u odnosu na susjedne normalnog tkiva. Međutim, mehanizam kojim NAIF1 gen izaziva apoptozu nije potpuno razumljiv. Naši rezultati pokazuju da NAIF1 minimalno izražena u svim ispitanim staničnim linijama raka želučanog. Naši podaci također pokazuju da NAIF1 je lokaliziran u jezgrama stanica što je detektirano pomoću promatranja zelene fluorescencije NAIF1-GFP spojenog proteina upotrebom fluorescentnog konfokalnom mikroskopijom. Dalje, komparativna proteomic pristup korišten je za identifikaciju diferencijalne ekspresije proteina između želuca staničnim linijama karcinoma MKN45 /NAIF1 (-) i MKN45 /NAIF1 (+). Našli smo pet proteini (proteasoma 26S podjedinice 2, proteasomalni 26S podjedinice 13, NADH-dehidrogenaze Fe-S protein 1, chaperonin sadrži TCP1 podgrupu 3 i tioredoksin reduktaze 1), koji su up-regulirana i tri proteini (ribonukleaza inhibitora 1, 14-3- 3 proteina epsilon izoforma i apolipoproteina AI vezanja proteina) koja su se regulira-u MKN45 stanicama ekspresijom NAIF1. Također smo otkrili da NAIF1 moglo poticajno staničnog ciklusa u G1 /S fazi mijenjajući izraz staničnog ciklusa bjelančevina cyclinD1, cdc2 i p21. Diferencijalno ekspresirana proteini ovdje identificirani su povezani s različitim staničnim od programa staničnog ciklusa, apoptozu i regulacije prijenosa signala i sugeriraju da NAIF1 može biti tumor supresor za raka želuca. Naše istraživanje donosi dokaze da razjašnjava ulogu tome kako NAIF1 funkcija u rak želuca pregled
Izvor:. Yang M, Zhong J, Zhao M, Wang J, Gu Y, Yuan X, et al. (2014) Prekomjerna ekspresija nuklearnu apoptoze inducira Faktor 1 preinačio proteomskog profila Ljudski raka želuca Cell MKN45 i izazvan staničnog ciklusa u G1 /S fazi. PLoS ONE 9 (6): e100216. doi: 10,1371 /journal.pone.0100216 pregled
Urednik: Rossella Rota, Ospedale Pediatrico Bambino Gesu ', Italija pregled
Primljeno: 27. listopada 2013. godine; Prihvaćeno: 23. svibnja 2014; Objavljeno: 13. lipanj 2014 pregled
Copyright: © 2014 Yang i sur. Ovo je otvorenog pristupa članak distribuirati pod uvjetima Creative Commons Imenovanje License, koja omogućuje neograničeno korištenje, distribuciju i reprodukciju u bilo kojem mediju, pod uvjetom da je izvorni autor i izvor su zaslužan
financiranja. Ovo istraživanje je podržan od strane National Key Basic Research programa Kine (2007CB914700). U financijeri nisu imali ulogu u studiju dizajna, prikupljanja i analize podataka, Odluka o objavi, ili pripremu rukopisa pregled
U konkurenciji interese.. Autori su izjavili da ne postoje suprotstavljeni interesi pregled
Uvod pregled
rak želuca je jedan od najčešćih malignih bolesti u svijetu uzrokuje oko 8% i 10% godišnje slučajevima i smrti od raka, respektivno. Prema svjetski izvještaj epidemija od strane Svjetske zdravstvene organizacije, gotovo milijun slučajeva raka želuca i 738,000 smrtnih Procjenjuje se da su se dogodile u 2008. [1], [2]. Mnogi su napori poduzeti u Klinički; Međutim, smrtnost pacijenata oboljelih od raka želuca je još uvijek kao visok kao 70% [2]. Jedan od razloga za ovu visoku smrtnost je da pacijenti s rakom želuca često ne dijagnosticira dok poodmakloj fazi, što je prekasno pružiti učinkovito liječenje. Dakle, postoji očita potreba za pronalaženje novih bio-markera i učinkovite strategije za rano dijagnosticiranje i liječenje karcinoma želuca. Pregled
Proteomika se koristi u mnogim područjima istraživanja, uključujući istraživanje raka. Zajednički uzorci u proteomskog analiza za istraživanje raka uključuju tkivo i krvi od pacijenata oboljelih od raka, kao i staničnih linija raka različitog podrijetla ili različitih tretmana [3] - [6]. Ove proteomsku analizu korišteni su istražiti nastanak i razvoj raka ili tražiti dijagnostičke biomarkera. Rezultati smo dobiveni proteomskom metode su ne samo zbog direktne regulacije razini transkripcije, već također odražavaju post-translacijske modifikacije proteina [3], [7]. Stoga, možemo analizirati oba izraza i reguliranje proteina s proteomsku analizu. Unatoč mnogim novim tehnikama, 2-dimenzionalni elektroforeza u kombinaciji s masenom spektrometrijom ostao najviše koristi metodu za proteomskog analizu. Pregled
faktor koji kodira humani gen nuklearna apoptoza inducira 1 (NAIF1) nalazi se na kromosomu 9q34.11 , NAIF1 kodira protein s myb U ovoj studiji, zaposlen proteomsku tehnologija temelji se na 2-dimenzionalni elektroforezu u kombinaciji s MALDI-TOF masene spektrometrije se identificirali proteine povezane s biološke funkcije NAIF1. U profilu ekspresije proteina želučanog raka stanične linije, sa ili bez MKN45 NAIF1 prekomjernom ekspresijom analizirani su i uspoređene pomoću 24 cm pH 3-10 NL raspon imobilizirani gradijent pH (IPG) trake. Za procjenu tih podataka, izmjerili smo RNA razine ekspresije svih različito izraženih proteina s tri proteini također potvrditi Western blota. Naši rezultati pokazuju da NAIF1 inducira staničnog ciklusa u G1 /S faze reguliranjem razine ekspresije cyclinD1 Cdc2 i p21 proteina. Rezultati naše studije može dovesti do boljeg razumijevanja kako NAIF1 radi u indukciji apoptoze te može baciti svjetlo na dijagnostici i terapiji želučanog karcinoma u budućnosti. Pregled Materijali i metode stanična kultura i transfekcija pregled Human želučanih stanične linije raka MKN45, BGC823, AGS i SGC7901 su dobiveni iz tumora Celi Bank kineske Academic medicinskih znanosti i kultivirane u tekućem Dulbeccovom minimalnom esencijalnom mediju (DMEM) obogaćenom sa 10% toplinski inaktiviranog fetalnog goveđeg seruma (FBS), 100 IU /ml penicilina, 100 ug /ml streptomicina na 37 ° C u vlažnoj 5% CO 2 atmosfere. DNA transfekcije je izvedena pomoću X-tremeGENE HP DNA transfekcije reagensa (Roche, Švicarska), u skladu s uputama proizvođača. Pregled Expression plazmidi izražavanja plazmidi pEGFP-N1-NAIF1, koji izražava NAIF1-GFP fuzijskog proteina, a pEGFP-N1, koja izražava zeleni fluorescentni protein (GFP), ljubazno je ustupio dr Qing Luo [10]. pregled Stanični ciklus distribucija analiza pregled eksponencijalno raste stanice su transfektirane sa pEGFP-N1 vektor ili pEGFP-N1-NAIF1 plazmida. Stanice se prikupe nakon 24 sati ili 48 sati nakon transfekcije, te 1 × 10 6 stanice su isprane dva puta s fosfatom-puferiranom fiziološkom otopinom (PBS), te su fiksirane s 4% paraformaldehidom pri 4 ° C tijekom 1 sata. Nakon centrifugiranja, stanične pelete se resuspendiraju u bojenje otopine (0.05 mg /ml propidij jodida (PI), 0,2 mg /ml RNase i 0,1% Triton X-100) na 4 ° C tijekom 15 min u mraku. Protočno citometrijska analiza za GFP i PI provedena je pomoću stanica analizatora BD LSR II (bd, San Jose, CA, USA). PI fluorescencija mjerena je među pozitivnim populacije stanica GFP i raspodjela staničnih ciklusa analizirani su pomoću ModFit LT3.2 softvera. Tri odvojena uzorka dobiveni su svi testovi su izvedeni u triplikatu. Pregled Kvantifikacija apoptoza kvantifikaciju apoptoze provedena je uporabom PE aneksina V Detection Kit apoptoze I (BD). Ukratko, BGC823 ili MKN45 stanice su transfektirane s pEGFP-N1 vektor ili pEGFP-N1-NAIF1 plazmida. Nakon 24 sata ili 48 sati nakon transfekcije, stanice su skupljene, isprane s hladnim PBS dva puta i zatim se ponovno suspendiraju u puferu za vezanje (10 mM Hepes /NaOH (pH 7.4), 140 mM NaCl, 2,5 mM CaClz 2) , Obnovljene suspendirane stanice se inkubiraju s fikoeritrinom (PE) konjugiranog aneksina V (AV) i 7-amino-aktinomicin (7-AAD) i mjereno protočnom citometrijom pomoću analizatora BD LSR II stanica. Četiri različita populacija stanica mogao biti otkriven u dot-zemljište: živih stanica (AV - /7-AAD -), apoptotične stanice u ranoj fazi (AV + /7-AAD - ), kasne faze apoptotične stanice (AV + /7-AAD +) i nekrotične stanice (AV - /7-AAD +). Najmanje 10.000 GFP pozitivne stanice su izbrojene po uzorku, a podaci su prikazani kao postotak apoptotičnih stanica (AV + /7-AAD - i AV + /7-AAD + ) među ukupnog broja stanica. Tri neovisna uzorka su pripreme i sve analize ponavlja u triplikatu. Pregled Konfokalni skenirajući pregled Četrdeset osam sati nakon transfekcije, stanice su isprane tri puta s PBS-om i fiksirane s 4% paraformaldehidom tijekom 15 min. na sobnoj temperaturi. Kako bi se poboljšala propusnost stanične membrane, stanice su inkubirane s 0,5% Triton X-100, nakon čega slijedi inkubiranje s 4 ', 6-diamidino-2-fenilindolom (DAPI) mrlja jezgre. Stanična distribucija NAIF1 analiziran praćenjem zelene fluorescencije NAIF1-GFP spojenog proteina pomoću Leica Microsystems Heidelberg GmbH mikroskopa. Pregled priprema Protein za 2-DE pregled Za svaki uzorak, 5 × 10 6 stanice su sakupljene i lizirane u 1 ml pufera za lizu (7 M urea, 2 M tiourea, 2% CHAPS, 20 mM DL-ditiotreitol (DTT), 1 mM fenilmetilsulfonilfluorida (PMSF), 30 mM natrijev fluorid, i 0,25 mg /ml RNaseA) kroz 1 sat na sobnoj temperaturi, a zatim centrifugirana pri 4 ° C tijekom 30 minuta. na 12.000 okretaja u minuti. Supernatant prenese u novu epruvetu i koncentrira u 0,1 M NH 4COOH. Pufera je dodana do konačnog volumena od 800 ul, a koncentracija proteina je određena korištenjem Bradfordovog testa (Tiangen, Beijing, Kina). Pregled Dvodimenzionalni elektroforeza pregled Dvodimenzionalni elektroforeza je izvedena kao što je ranije [5] opisano. Ukratko, 1 mg proteina je razrijeđen u 450 ul sa rehidracije pufera (7 M urea, 2 M tiourea, 2% CHAPS i 20 mM DTT). IPG trake (IPG 24 cm, pH 3-10, NL, GE granica.) Su bile rehidrirane sa rehidratiranim uzorcima tijekom 18 sati na sobnoj temperaturi. Proteini su podvrgnute izoelektričnom fokusiranju s Ettan IPGphorIII (GE, CT, USA) sukcesivno se 1 sat na 100 V, 1 h pri 250 V, 1 h pri 500 V, 1 h pri 1000 V, 1 h na 3000 V, 1 h na 5000 V, 2 h na 8000 V, a 6 h pri 8000 v da bi dobili ukupno 80 KVH. Nakon izoelektričnog fokusiranja, IPG trake se uravnoteži sa ravnotežnim puferom I (6 M urea, 150 mM Tris-HCl (pH 8,8), 30% glicerol, 2% SDS, 1% DTT) kroz 15 minuta. nakon čega slijedi druga inkubacija s drugom uravnoteživanje pufera II (6 M urea, 150 mM Tris-HCl (pH 8,8), 30% glicerol, 2% SDS, 2,5% jodoacetamid) tijekom 15 min. Druga dimenzija SDS-PAGE je izvedena s 12,5% SDS-PAGE gelovima pomoću Ettan Dalt ŠEST vertikalne sustave (GE). Pregled Gel za bojenje i slika analiza pregled SDS-PAGE gelovi su fiksirani u pričvrsnog puferu (10% CH 3COOH, 40% C 2H 5OH, a 50% DDH 2O) tijekom 30 minuta. Gelovi su potom isprani DDH 2O 10 min. 3 puta i obojani sa Coomassie blue G-250. Pregled Gelovi su skenirani uz skener pomoću MagicScan softvera za procjenu licu mjesta uzoraka. Imagemaster platine softvera (verzija 5.0), da se analiziraju slike gel. Analizirani su mrlje koje su uočene i na kontrolnoj gela i NAIF1 gel i intenzitet svakom mjestu se kvantificira izračunavanje volumena točke nakon normaliziranja sliku gel. Kvantitativna analiza gel slika (tri ponavljanja /uzorak) uzeti su i mjesta sa statistički značajna razlika (t-test, * P izvoznici < 0,05). Izrezani su i probavljaju za identifikaciju pregled Protein identifikacije pregled različito izražena proteinske mrlje su izvađeni i de-obojeni u 50 mM NH 4HCO 3 /acetonitril (50/50) i suši vakuum centrifugiranjem. Gel komadići zatim razgrađen s 10 ng /ml tripsina (Promega, WI, USA) u 50 mM NH 4HCO 3 puferu pri 37 ° C preko noći. Tekućina tripsina je prebačena u čistu epruvetu, razrijedi se sa 100 ul 60% acetonitril /0,1% trifluoroctenom kiselinom i pomiješa se s ultrazvukom 15 min, tri puta. Sva stečena tekućina je sakupljena i osušena pod vakuumom i pohranjeni na -80 ° C. Eluirani peptidi su analizirane uporabom Bruker ultraflex MALDI-TOF /TOF opremljen izvorom izviđačevo do BGI-Beijing. Rezultati za masovno spektra su u suprotnosti protiv sekvence sisavaca iz NCBInr (bez suvišne) baza podataka za peptida masovnu identifikaciju otisaka prstiju. Pregled RNA, RT i real-time PCR Q pregled Ukupna RNA bila ekstrahirana pomoću Trizol reagensa (Invitrogen) prema uputama proizvođača. cDNA je sintetizirana reverznom transkripcijom upotrebom 1 ug ukupne RNA pomoću oligo (dt) 18 primeri i M-MuLV reverzne transkriptaze (TAKARA). pregled reverzne transkripcije PCR primeri za NAIF1 i β-aktin su kako slijedi: NAIF1 smisla, 5'AGCCACGGTCACCCTGACACA-3 ', i anti-sense, 5'CGTGTCTGCATGCTGGGCCAT-3'; ß-aktin smisla, 5'GGGCACGAAGGCTCATCATT-3 ', i anti-sense, 5'AGCGAGCATCCCCCAAAGTT. Svi primeri su dizajnirani pomoću NCBI eksplozije i kupiti od Sangon, Beijing. Pregled Kvantitativna PCRjeizvedenas na SYBR Green qPCR Kit (TAKARA, Japan) sa reakcijski sustav 20 ul postavljen u skladu s uputama proizvođača. ekspresije ciljanog gena je analizirana pomoću odgovarajuće stvarnom vremenu qPCR primera (Tablica 1). β-aktin je korišten za normalizaciju. U stvarnom vremenu qPCR je izvedena na ABI7300 ciklički uređaj (ABI, MA, USA), uz sljedeće uvjete: denaturacija 30 sekundi pri 95 ° C, a zatim 40 ciklusa denaturacije na 5 s na 95 ° C, a proširenje za 31 s na 60 ° C. Topljenje analiza krivulja izvedena je na kraju za provjeru specifičnost očekivanog produkta PCR. Relativni izraz izračunata je pomoću dvije standardne metode krivulje. Tri neovisna Uzorci su pripravljeni za svaki uvjet i svaki eksperiment izveden trostruko. Pregled Western blotting pregled Western blot je izveden kako je prethodno opisano. Ukratko, 2 × 10 6 stanice su sakupljene sa struje sredstva, skupljen centrifugiranjem 5 minuta pri 500 g pregled i ispere 3 puta s PBS-om. Stanice su zatim lizirane sa 100 ul pufera za lizu (50 mM Tris-HCl, pH 7,4, 150 mM NaCl, 1,5% NP-40, 0,1% SDS, te 50 ug /ml PMSF, svježe dodane inhibitore proteinaze koktela) na ledu 30 min. Lizati su centrifugirani na 13000 rpm tijekom 15 minuta. i koncentracija proteina je određena korištenjem Bradford metode. Pedeset mikrograma proteina je odvojena na 12% SDS-PAGE i prenesen na polivinilidenfluorid membrane. Membrane su blokirane s 5% BSA u TBST tijekom jednog sata na sobnoj temperaturi, nakon čega slijedi inkubacija sa otopinama primarna antitijela u skladu s uputama proizvođača (β-aktina, 1:5000, Sigma, NAIF1, 1:1000, Santa Cruz, 14- 3-3 ε, 1:500, Santa Cruz, TCP1-γ, 1:1000, Abcam; TXNRD1, 1:1000, Abcam; CyclinD1, 1:1000, CST, cdc2, 1:500, CST, i p21, 1 :500, CST). Membrane su zatim isprane 3 puta s TBST, nakon čega slijedi inkubiranje s odgovarajućim sekundarnim antitijelima za dva sata na sobnoj temperaturi. Signali su detektirani pomoću ECL kemiluminiscencijom sustava. β-aktin je bio zaposlen kao kontrola. pregled Statistička analiza pregled Sve statističke analize provedene su pomoću SPSS 13.0 softvera (SPSS Inc., Chicago, IL, USA). Podaci su izraženi kao prosjek ± SD. Student-ov t-test je korišten za statističku usporedbu. Pridruženom vrijednost P <. Pregled 0.05 je smatrana značajnom Rezultati Transfektirane NAIF1 lokaliziran u jezgri pregled Oba preokrenuti transkripcije PCR i Western blot-eksperimenata pokazao da NAIF1 minimalno izražena u želučanim staničnim linijama karcinoma, MKN45, BGC823, AGS i SGC7901; a NAIF1 lako otkrivena kada je transfektiran u stanice (Slika 1A, i B). transfektirane smo NAIF1-GFP fuzijski konstrukciju u MKN45 i BGC823 stanica i GFP vektor je korišten kao kontrola. Konfokalna mikroskopija je pokazao da kada su stanice transfektirane sa pEGFP-N1-NAIF1 konstrukta, zeleni fluorescentni je otkriven samo u jezgri; naprotiv, zelena flurescent signal detektiran u cijeloj stanici kada se transfektira s GFP vektor (Slika. 1C). Isti rezultati su i kod ostalih staničnih linija kao što je BGC823 (Slika S1). Ovi pronalasci su potvrdili da transfektirane NAIF1 protein lokaliziran u jezgri. Pregled NAIF1 induciranih staničnog ciklusa u G1 /S faze pregled Profil staničnog ciklusa stanica želuca raka pod djelovanjem NAIF1 je istražena Sljedeći. GFP-pozitivne stanice su bile analizirane kako bi se osiguralo ispravnu populacije je korištena (Slika S2). Analiza protočnom citometrijom pokazala je da NAIF1 izazvao značajnu promjenu u raspodjeli staničnog ciklusa: povećanje stanične populacije u G0 /G1 fazi i smanjenje u S fazi opažena u stanicama ekspresijom NAIF1 usporedbi sa stanicama koje su transfektirane sa praznim vektor, i nakon transfekcije 24 i 48 h. Kao što je prikazano na slici. 2A, protočna citometrija pokazala da 24 h poslije transfekcije, približno 54% BGC823 stanica s transfektiranim pEGFP-N1 vektora su u fazi G0 /G1 i 34% i 12% stanica bilo je u S fazu i G2 /M fazi, odnosno , S druge strane, u BGC823 transfektiranih s pEGFP-N1-NAIF1 konstruirati bilo je određeno povećanje postotka stanica u G0 /G1 fazi (74%), kao i smanjenje postotka stanica u S fazi (26%) i G2 /M fazi (0%). Četrdeset osam sati nakon transfekcije, približno 36% od kontrolnih stanica su BGC823 su u G0 /G1 fazi i 59% i 5% od stanica u S fazu i G2 /M fazi respektivno. U BGC823 transfektiranih s pEGFP-N1-NAIF1 konstrukciju, oko 55% stanica bilo je u G0 /G1 fazi i 37% i 8% stanica bilo je u S fazu i G2 /M fazi, respektivno. U MKN45 stanicama 24 h nakon transfekcije, oko 56% stanica transficiranih s pEGFP-N1 vektora su u G0 /G1 fazi, i 29% i 15% stanica bilo je u S fazu i G2 /M fazi, respektivno. Približno 76% MKN45 stanicama transficiranim s pEGFP-N1-NAIF1 konstrukta su u G0 /G1 fazi i postoci stanica u S fazu i G2 /M fazi smanjene su do 24% i 0%, respektivno. Četrdeset osam sati nakon transfekcije, približno 43% od kontrolnih stanica MKN45 su u G0 /G1 fazi, a 43% i 14% stanica bilo je u S fazu i G2 /M fazi, respektivno. U MKN45 transfektiranih s pEGFP-N1-NAIF1 konstrukciju, oko 56% stanica bilo je u G0 /G1 fazi i 28% i 16% stanica bilo je u S fazu i G2 /M fazi, odnosno (Slika. 2B). Ovi rezultati jasno pokazuju da prekomjerna ekspresija izazvanog staničnog ciklusa NAIF1 u G1 /S faza želučane stanice raka BGC823 i MKN45. Pregled Da bi se objasnio mehanizam kojim NAIF1 izazvanu staničnog ciklusa, ispitali smo moguće uloge cyclinD1 , P21 i cDC2 proteini, koji su važni u regulaciji staničnog ciklusa u G1 /S fazi. Četrdeset osam sati nakon transfekcije, ekspresijske razine cyclinD1 i cdc2 smanjeni u usporedbi s kontrolnim stanicama, kako u BGC823 i MKN45 stanica. Osim toga, razina ekspresije p21 povećane su (Slika. 2C). Profili proteina MKN45 stanice transfektirane s pEGFP-N1-NAIF1 konstrukti kao tretirane skupine ili s pEGFP-N1 vektorom kao što je kontrolna grupa su mjerene 2-DE 48 sati nakon transfekcije. Ukupno, više od 700 točke su riješeni, od kojih je 11 proteine je > 1,5 puta različito izražen kao određena analizom s Imagemaster verziji 5.0. Diferencijalno ekspresirana proteina mrlje su izrezana iz gela i 8 proteini se identificiraju pomoću MALDI-TOF analiza /TOF. Predstavnik liječi i kontrolna skupina 2-DE gel Karte su prikazani na slici. 3A i različito izraženi proteinske točke su označene. Megaskopski 2-DE gel slike svake od različito izraženi proteinskih točaka zastupljeni na slici. 3B i 3C. Pet proteina bila viša u liječenoj skupini, uključujući NADH dehidrogenaza (ubikinonom) Fe-S proteina 1 (NADUSF1) chaperonin sadrži TCP1 podjedinicu 3 (TCP1-y), tioredoksin-reduktaze 1 (TXNRD1), proteazoma 26S podjedinica 2 ( PSMC2) i proteasoma 26S podjedinice 13 (PSMD13). 3. Proteini su podregulirani uključujući ribonukleaze inhibitora 1 (RNH1) 14-3-3 proteina Ns izoforme (14-3-3 ε) i apolipoproteina A-I-vezujući protein (APOAIBP). Tablica 2 prikazuje specifične informacije o tim proteinima i njihovu razinu diferencijalne ekspresije. Pregled Validacija različito izraženi proteini Real-time qPCR i Western blot su provedena za provjeru 2-DE rezultate. Razine ekspresije gena identificiranih proteina analizirani su u realnom vremenu qPCR te su u skladu s rezultatima 2-DE, osim jednog proteina 14-3-3ε (Slika. 4A). Tri proteini su izabrani na temelju njihove važnosti i mogućih funkcija za daljnju analizu pomoću Western blot za potvrđivanje rezultata 2-DE. Rezultati pokazuju da su razine ekspresije proteina od TXNRD1 i TCP1-y su bile značajno povišene u NAIF1 skupini u odnosu na kontrolnu skupinu ( P pregled 0,05), dok je razina ekspresije proteina 14-3-3ε bila je značajno smanjena u NAIF1 grupe ( P < pregled, 0,05) (Slika 4B).. Sve u svemu, zapadne rezultati blot su u skladu s rezultatima 2-DE pregled Rasprava pregled Nekoliko studija je provedena kako bi opisali gen NAIF1. Međutim, malo je poznato o proteomic profil NAIF1 ekspresija mu je povećana. Cilj ovog istraživanja bio je otkriti i identificirati proteine čija bi ekspresija promijenilo u MKN45 stanicama ekspresijom NAIF1. Nadalje, dokaz je pod uvjetom da objasni kako NAIF1 funkcije u indukciji apoptoze stanica i drugih aktivnosti. A 2-DE strategija je korišten u ovom istraživanju zbog zgodan metodologije i visoku učinkovitost. Ukupno, otkrili smo i identificirali 5 proteine koji su up-regulirana i 3 proteine koji su dolje uređena MKN45 stanicama ekspresijom NAIF1 u odnosu na kontrolnu skupinu. Identificirani proteini uključuju brojne fiziološke aktivnosti, kao što su degradacija proteina, kontrola staničnog redoks homeostaze, napredovanja staničnog ciklusa, regulaciju citoskelet, stanični stres odgovor, apoptoze i regulaciju metabolizma. Profil staničnog ciklusa želučanih staničnim linijama raka, BGC823 i MKN45 također je istražen i naši su rezultati pokazali da prekomjerno eksprimiraju NAIF1 mogu inducirati prekid staničnog ciklusa u G1 /S faze preko promjene razine ekspresije proteina regulacije staničnog ciklusa cyclinD1 Cdc2 i p21 . pregled Rezultati iz Western hibridizacija i obrnuto transkripcije PCR je pokazao da NAIF1 minimalno izražena u želučanim stanicama raka. Podaci predstavljeni ovdje analogna Luo je nalaz u tkivima [10]. Nadalje, utvrdili smo da NAIF1 je nuklearna proteina u želučanom staničnim linijama karcinoma MKN45 i BGC823. Budući da genomska DNA, uglavnom postoji u jezgri, ti podaci ukazuju da NAIF1 može funkcionirati u jezgri interakcijom s genomskom DNA i nukleoproteina kako bi se utjecalo na ekspresiju gena i proteina kompleksan. Iz tog razloga provedena proteomsku analizu da istraži proteomski profiliranje MKN45 stanica ekspresijom NAIF1. Pregled Abnormalna regulacija staničnog ciklusa je izuzetan karakteristika stanica raka [11]. Studije su pokazale da su mnogi male molekule mogu aktivirati stanični ciklus kontrolne točke i izazivaju zaustavljanje staničnog ciklusa, koji omogućuju stanicama popraviti nedostatke. Međutim, neuspješni repairation može dovesti do apoptoze [12] - [15]. Naši rezultati pokazuju da NAIF1 inducira staničnog ciklusa u G1 /S fazi. Prijelaz iz G1 u S fazu zahtijeva aktivaciju montaže cyclinD-CDK4 /6 i ciklin-cdc2 (također poznat kao CDK1). U međuvremenu, p21 inhibira aktivnost cdc2 i posreduje montažu i aktivaciju cyclinD-cdk4 /6 u citoplazmi, i inhibira njihovu aktivnost u jezgri [16]. U ovom istraživanju, Western blot analizom otkrio da je razina ekspresije proteina u cyclinD1 i cdc2 bio smanjen, dok je razina ekspresije proteina p21 povećana je u stanicama ekspresijom NAIF1. Ovi rezultati sugeriraju da G1 /S staničnog ciklusa inducirana NAIF1 posredovana p21 i cyclinD1 puta. Osim toga, pokazalo se da je 48 h nakon transfekcije, populacija apoptičnih stanica povećava oko 10% u stanicama ekspresijom NAIF1 uslijed staničnog ciklusa (slika S3). Pregled 26S proteasoma je konzervativna organela u svim eukariotske stanice i ona je odgovorna za unutarstanične razgradnju proteina [17]. Proteini koji se razgrade 26S proteasoma sudjeluju u nizu bioloških procesa, uključujući apoptozu, stanični ciklus i rast i regulira ekspresiju mnogih gena koji pak regulirati druge procese [18]. Poremećaj ravnoteže razgradnje proteina dovodi do nastanka i razvoja raka. Tako, 26S proteasoma je atraktivna meta za terapiju raka. Evo, našli smo da su dvije podjedinice 26S proteasomalni, PSMC2 i PSMD13, bili su up-regulirana u MKN45 stanicama ekspresijom NAIF1. PSMC2 i PSMD13 su podjedinice proteasoma 19S, koji je regulatorni čestica (RP) na proteasoma 26S. PSMC2 je ATPaze a PSMD13 je ne-ATPaze. Neki istraživači smatraju da inhibicija 26S proteasoma može dovesti do apoptoze stanica karcinoma, i proteazom inhibitore može se upotrijebiti za liječenje karcinoma [19] - [21]. Međutim, studija Tan i sur. Naši podaci također pokazuju da su dva proteina, TXNRD1 i NDUFS1 su up-regulirana NAIF1. TXNRD1 regulira redoks stanje proteina tiolima u stanicama sisavaca i funkcije u oba promociji i prevenciji raka u različitim vrstama karcinoma [24] - [27]. Nema studije koje istražuju ulogu TXNRD1 u raka želuca. Prema našem mišljenju, TXNRD1 mogu sudjelovati u suzbijanju želučani genezu raka ili regulaciji TXNRD1 može biti prilagodljiva mehanizam kao odgovor na oksidativni stres koji nastaje prekomjernom ekspresijom NAIF1. NDUFS1 gen kodira 75 kDa Fe-S podjedinicu, koji je jedan od sedam mitohondrija podjedinice kompleksa sam [28]. Kompleks sam je najveća lanca enzima dišnog sustava i nedostatak kompleksa I. je glavni uzrok niza urođenih mitohondrijske bolesti, kao što su Leigh sindrom [29]. Osim toga, 75 kDa podjedinica kompleksa I je kaspaza supstrat, koji je uključen u mitohondrijskog apoptoze putem. Kaspaze cijepanje NDUFS1 je potreban za nekoliko mitohondrija promjene povezane s apoptoze, uključujući razine ATP-a, ROS proizvodnje i gubitak integriteta plazmatske membrane i tako dalje [30]. Od NAIF1 inducira apoptozu preko mitohondrijske puta [8], mi pretpostavljamo da je up-regulacija NDUFS1 sudjeluje u procesu apoptoze potaknute NAIF1. Pregled TCP1-γ je identificiran kao chaperonin u eukariotske citosolu. Prethodna su istraživanja pokazala da TCP1-γ je značajno izražen u tumorima hepatocelularnog karcinoma u usporedbi s uparenim susjedne ne-zloćudnih tumorskih tkiva [31], [32]. Međutim, odnos između TCP1-y i raka želuca je još uvijek nepoznat, a potrebno je daljnje istraživanje. Pregled S druge strane, identificirali smo tri proteine, 14-3-3ε, RNH1 i APOAIBP, koji su bili na dolje regulirana MKN45 stanicama ekspresijom NAIF1. 14-3-3 je protein obitelj koja se sastoji od multifunkcionalnih proteina koji se vežu i moduliraju funkcije širokog raspona staničnih proteina. Nadalje, oni sudjeluju u različitim biološkim procesima, uključujući regulaciju staničnog ciklusa kontrolne točke, apoptoze i kontrolu rasta stanica [33]. Nekoliko studija pokazalo da 14-3-3ε ekspresija kojeg je povećana kod raka pluća, hepatocelluar crijeva, rak dojke i vulve karcinoma pločastih stanica [34] - [37]. Jedina iznimka od ovog povećanog 14-3-3ε izražavanja je u želučanim tkiva raka, gdje je smanjena ekspresija [38]. Osim toga, prethodne studije pokazale su da se na regulaciju 14-3-3ε može spriječiti loše pokreću apoptozu u endotelnim stanicama [39] i nesteroidni protuupalni lijekovi mogu izazvati apoptozu stanica raka debelog potiskivanjem 14-3- 3ε izraz [40]. Štoviše, patohistološko istraživanje izvijestio da je u 114 bolesnika hepatocelularnog karcinoma, pojačana ekspresija 14-3-3ε bila je značajno povezana s visokim rizikom od metastaza, te smanjena stopa preživljavanja [35]. Stanična eksperimenti potvrdili su da je povećana 14-3-3ε izraz potiče migraciju hepatocelularni karcinom i potiče prijelaz epitela-mezenhimalne (EMT) zbog izazivanja Zeb-1 i puž izraza [41]. Da zaključimo, 14-3-3ε je izvanredan onkogena koji sudjeluje u razvoju nekoliko tumora i igra važnu ulogu u apoptozi i metastaze. Evo, našli smo da 14-3-3ε je dolje regulirana MKN45 stanicama ekspresijom NAIF1, sugerirajući da 14-3-3ε mogu biti uključeni u proces apoptoze potaknute NAIF1. Nadalje, naši podaci podrazumijeva da osim induciranja apoptoze i staničnog ciklusa, NAIF1 mogu igrati ulogu u migraciji stanica i metastaziranje. Naši rezultati pokazuju da su razine ekspresije proteina od 14-3-3ε smanjeni, a RNA je povećana. Ovi rezultati pokazuju da NAIF1 regulira razine ekspresije 14-3-3ε posttranslationally. Naši podaci pokazuju razinu diferencijal ekspresije 14-3-3ε su u suprotnosti s Leal a [38], što može biti posljedica razlike između stanica i tkiva, ili se može pripisati pristranosti u odabiru uzoraka. Pregled RNH1 je u citosolu protein koji inhibira RNases i tvori s visokim afinitetom heterodimera s njima igrati kontroverznu ulogu u angiogeneze [42]. Došlo je do povećanja istraživanja ispitati odnos između RNH1 i raka.
su slični domenu na N-terminalnom području [8], [9]. Prethodne studije su pokazale da izražajnost NAIF1 u ljudskim staničnim linijama karcinoma HeLa i MKN45 inducira apoptozu [8], [10]. , Štoviše, Luo sur pregled pronađeno da NAIF1 značajno izraženo u normalnom tkivu želuca, dok je ekspresija podregulirani ili izgubljene u želučanom tkivu karcinoma ( P < pregled 0,001). Osim toga, NAIF1 izraz lica bio je veći u dobro diferencirani ( P pregled = 0,004) nego u moderately- ili slabo diferenciranim rakom želuca [10]. Međutim, uloga NAIF1 u reguliranju stanične ekspresije proteina profil je nepoznat. Pregled
Komparativna proteomic analiza želučanog raka stanične linije MKN45 sa ili bez dodatnog izražavanja NAIF1 proteina Netlogu
Sugerira da čimbenik nekroze tumora (TNF) -α aktivira 26S proteasomalni sustav regulaciju razine ekspresije na 26S proteasomalni podjedinica [22]. TNF-α je dobro poznati citokin koji mogu potaknuti apoptozu u rasponu od stanica karcinoma, i sada se koristi u klinici, kao regionalni liječenje lokalno napredne sarkomi mekih tkiva, te metastaze melanoma bi se izbjeglo amputacije ekstremiteta. [23] Kao i TNF-a, NAIF1 također ima sposobnost da inducira apoptozu, što znači da je 26S proteasomalni mogu biti uključeni u proces apoptoze potaknute NAIF1. Pregled