Stomach Health > gyomor egészség >  > Gastric Cancer > gyomorrák

PLoS One: Nem invazív Látványterv mikroRNS-16 a kemorezisztenciájának gyomorrák használata Dual riporter gén képalkotó System

absztrakt katalógusa

A mikroRNS (miRNS) hozták összefüggésbe, hogy központi szerepet játszik a fejlesztés a gyógyszer-rezisztencia a különböző rosszindulatú daganatok. Azonban sok vizsgálatot végeztek a in vitro katalógusa szinten, és nem biztosítja a in vivo katalógusa információt funkcióit miRNS a rákellenes gyógyszer-rezisztencia. Itt bevezettük a kettős riporter gén képalkotó rendszer kíméletesen nyomon kinetikus kifejezése miRNS-16 alatt kemorezisztenciájának gyomorrákban mind in vitro katalógusa és in vivo katalógusa. Emberi nátrium-jodid szimporter (hNIS) és szentjánosbogárluciferáz (Fluc) géneket összekapcsolódva hNIS /Fluc kettős fúziós riporter gén és generál humán gyomorrák sejtvonal NF-3xmir16 és multidrog sejtvonal NF-3xmir16 /VCR. Radiojód felvételét és Fluc lumineszcens jel in vitro katalógusa jól korrelál életképes sejtek számát. A luciferáz tevékenységek és radiojód felvételét NF-3xmir16 sejteket feltűnően elnyomott exogén vagy endogén miRNS-16. Az NF-3xmir16 /VCR sejtek jelentős növekedést mutatott a 131I-felvétel és lumineszcenciaintenzitás képest NF-3xmir16 sejteket. A radioaktivitás in vivo katalógusa 99mTc-pertechnetát képalkotás és az intenzitás biolumineszcenciával képalkotó szintén emelkedett NF-3xmir16 /VCR képest, hogy az NF-3xmir16 xenograftok. Továbbá, ezt a riporter gén rendszer, azt találtuk, hogy az etopozid (VP-16) és az 5-fluorouracil (5-FU) aktivált miRNS-16 expressziós in vitro
és a in vivo katalógusa, és a túlszabályzását miRNS-16 p38MAPK függő, de az NF-kB független. Ez a kettős képalkotó riporter gén lehet kézbesíteni, mint új eszköz in vivo katalógusa képalkotó mikroRNS a kemorezisztenciájának rák, valamint a korai felismerés és diagnózis a klinikán. Katalógusa

Citation: Wang F, Song X, Li X, Xin J, Wang S, Yang W, et al. (2013) Noninvasive vizualizáció mikroRNS-16 a kemorezisztenciájának gyomorrák használata Dual riporter gén képalkotó rendszer. PLoS ONE 8 (4): e61792. doi: 10,1371 /journal.pone.0061792 katalógusa

Szerkesztő: Javier S. Castresana, Navarrai Egyetem, Spanyolország katalógusa

Beérkezett: november 21, 2012; Elfogadva: március 13, 2013; Megjelent: április 17, 2013 katalógusa

Copyright: © 2013 Wang et al. Ez egy nyílt hozzáférésű cikk feltételei szerint terjeszthető a Creative Commons Nevezd meg! Licenc, amely engedélyezi a korlátlan használatát, a forgalmazás és a reprodukció bármilyen adathordozón, feltéve, hogy az eredeti szerző és a forrás jóváírásra. Katalógusa

Forrás: Ez a munka támogatta a Program a Nemzeti Alap Kutatási és Fejlesztési Program of China (973) alatt Grant No. 2012CB518101, 2011CB707702, a Nemzeti Természettudományi Alapítvány Kína szerint Grant sz. 81090272, 81090274, 81227901, innovációs csapat fejlesztési támogatás Kína Tanszék Oktatási (2010CXTD01), 863 Program of China (2012AA02A603) és a Nemzeti Key Technology Support Program keretében Grant No. 2012BAI23B06. A finanszírozók nem volt szerepe a tanulmány tervezés, adatgyűjtés és elemzés, döntés, hogy közzéteszi, vagy a készítmény a kézirat. Katalógusa

Érdekütközés: Társszerző Xiaoyuan Chen szolgál szerkesztő a folyóirat. Ez nem változtat a szerzők betartása minden PLoS One politikák adatok megosztása és anyagok. Katalógusa

Bevezető katalógusa

A gyomorrák továbbra is az első vezető daganatos halálok Kínában és a negyedik leggyakoribb rosszindulatú daganat világszerte ellenére drámai csökkenést a halálozási és megbetegedési az elmúlt három évtizedben [1]. Kemoterápia már széles körben használják kezelésére egyaránt operálható és előrehaladott gyomorrák, ami javulást a teljes túlélés, valamint életminőségét betegeknél [2], [3]. Azonban a hosszú távú kemoterápiát gyakran nem, hogy megszüntesse tumorsejtekre, mivel az intrinsic vagy szerzett multidrog rezisztencia (MDR), amely a leginkább elsődleges oka a tumor kiújulásának [4]. Jelenleg, a MDR tartották, mint egy multifaktoriális jelenség magában foglaló több fő mechanizmusokat, beleértve a fokozott anyagcsere a drogok, csökkent felvételét vízoldható gyógyszerek, megváltozott gyógyszercélpontok, csökkentett intracelluláris hatóanyag-koncentráció efflux pumpák, megváltozott sejtciklus ellenőrző pontokat és indukált vészhelyzeti válasz gének csorbítaná apoptotikus utak, etc katalógusa [5]. Bár az MDR mechanizmusokat már széles körben feltárt, a legfontosabb tényezők a jelenség továbbra is nagyrészt tisztázatlan.

A mikroRNS (miRNS-ek) egy új osztályát endogén kis nem-kódoló RNS-ek (19-23 nukleotid), amely negatívan szabályozzák a gén kifejezést itt a poszt-transzkripciós szinten tökéletes vagy tökéletlen bázispárosodás a 3 'nem transzlálódó régiót (UTR) a megcélzott mRNS-ek, és ezáltal indukálják mRNS lebomlás vagy fordítás elnyomás [6]. Jelenleg feltörekvő vizsgálatok arra utaltak, létezését és fontosságát miRNS az evolúció rákellenes gyógyszer-rezisztencia és miRNS expressziós profil összefüggésbe lehet hozni a fejlődés a gyógyszer-rezisztencia [7] - [10], jelezve, hogy a miRNS-közvetített formában a gyógyszer-rezisztencia egy újabb mechanizmus MDR. A mi korábbi vizsgálatban azt jelentették, hogy két miRNS, miRNS-15b és miRNS-16, arra eltérően expresszált egy multidrog-rezisztens humán gyomorrák sejtvonal SGC7901 /VCR és a szülői sejtvonal SGC7901 [11]. Azonban végeztek csak a in vitro katalógusa szinten, és nem tükrözik az in vivo katalógusa információt funkcióit miRNS a rákellenes gyógyszer-rezisztencia. Katalógusa

Recent advances a molekuláris képalkotó eljárások segítségével a noninvazív megjelenítés a normális és abnormális sejtszintű folyamatokat élő alanyok molekuláris szinten, nem pedig anatómiai szinten [12]. Számos noninvazív stratégiákat, mint például egy fluoreszkáló fehérje, luciferáz riporter gén, nukleolin aptamer vagy fluoreszcens molekuláris beacon konjugált nanorészecske, dolgoztak ki, hogy figyelemmel kíséri a expressziós mintázatát különböző miRNS-ek alatt carcinogenesis, neurogenezis vagy izomképződés in vitro
és in vivo katalógusa [13] - [16]. A jelen tanulmány volt, hogy nem invazív módszer ellenőrzésére miRNS-16 a kemorezisztenciájának gyomorrák keresztül kettős képalkotó riporter gén rendszert, amelyben az emberi nátrium-jodid szimporter (hNIS) és szentjánosbogárluciferáz (Fluc) géneket kapcsolódik egy fúziós gént biolumineszcencia képalkotás és 99mTc-pertechnetát gamma kamera képalkotó in vivo katalógusa.

anyagok és módszerek katalógusa

Állatok katalógusa

specifikus kórokozóktól mentes 8 hetes -old BALB /c csupasz egereket a Shanghai Animal Center Kínában és tenyésztették a negyedik Katonai Orvostudományi Egyetem állati központ, Kína. Az összes kísérleti állatokat elhelyezték alatt specifikus patogénmentes körülmények között. Az állat protokollok ebben a tanulmányban alkalmazott hagyta jóvá negyedik Katonai Orvostudományi Egyetem etikai bizottsága. Minden kísérleti eljárás szerint elvégzett negyedik Katonai Orvostudományi Egyetem Útmutató a Care and Use of Laboratory Animals által megfogalmazott Nemzeti Társaság orvosi kutatás. Katalógusa

Reagensek és antitestek katalógusa

Egér monoklonális antitest ellen hNIS (ab17795) vásároltunk a ABCAM. Nyúl poliklonális antitest specifikus a Bcl-2-t vásárolt a Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA). Bay11-7082 (NF-kB inhibitor) és SB203580 (p38 MAPK-inhibitor) kaptuk Beyotime Intézet Biotechnology (Shanghai, Kína). A rákellenes gyógyszerek, beleértve a vinkrisztin (VCR), etoposid (VP-16), a mitomicin C (MMC), ciszplatin (CDDP), 5-fluor-uracil (5-FU) és az adriamicin (ADR) vásároltunk a Wolsen Biotechnology (Xi'an, Kína). A GV260-Fluc-Puro lentivírus plazmidot Sanghaj GeneChem Company (Sanghaj, Kína). Minden sejt táptalaj és a szérum vásároltuk a Gibco (Grand Island, NY).

Dual riporter gén plazmid konstrukció

A kódoló szekvenciáját hNIS gént amplifikáltunk PCR-rel egy plazmidból bocsátotta rendelkezésünkre Dr. Weidong Yang (negyedik Katonai Orvostudományi Egyetem, Kína) az alábbi primerek használatával: katalógusa

hNIS-Fw: 5'-CGGGATCCCGCCACCATGGAGGCCGTGGAGACC-3 'katalógusa

hNIS-Rev: 5'-CGGGTACCGGTACGAGGTTTGTCTCCTGCTGGTC-3 "katalógusa

az építési kettős expressziós vektor, a cDNS hNIS gén került be a BamHI katalógusa I és Age katalógusa I restrikciós helyek egy lentivirális vektor GV260 -Fluc-Puro (Shanghai GeneChem, Kína) kódoló Fluc gén szabályozása alatt ubiquitin promóter. Az így kapott két expressziós konstrukciót GV260-hNIS /Fluc tovább előállításához használt GV260-hNIS /Fluc-3xmir16 plazmid. Három példányban komplementer szekvenciák ellen miRNS-16 (3xmir16) ültettünk be, miután a stop kodonját a hNIS /Fluc fúziós gén létrehozásához GV260-hNIS /Fluc-3xmir16 (1a ábra). A rántotta nukleotid szekvenciáját hasonló hosszúságú 3xmir16 is beilleszteni 3'UTR a hNIS /Fluc fúziós gén, így a kontroll konstrukcióval (GV260-hNIS /Fluc-tülekedés. A 3xmir16 szekvencia vagy kódolt kaptuk izzítással a következő oligonukleotid

3xmir16-Fw: 5'-CGCCAATATTTACGTGCTGCTACGCCAATATTTACGTGCTG-CTACGCCAATATTTACGTGCTGCTA-3 'katalógusa

3xmir16-Rev: 5'-TAGCAGCACGTAAATATTGGCGTAGCAGCACGTAAATAT-TGGCGTAGCAGCACGTAAATATTGGCG-3' katalógusa

tülekedés-Fw: 5 '- TCGTGGCGTCATTTCTTCAGAATCCGTCCTCCCAAGTACT-CAGTGTGCTAATGTCTATCGATACAA-3'

tülekedés-Rev: 5'-TTGTATCGATAGACATTAGCACACTGAGTACTTGGGAGG-ACGGATTCTGAAGAAATGACGCCACGA

gyomorrák sejttenyészet és stabil sejtvonal generáció

emberi gyomorrák sejtvonalat SGC7901 és multidrog-rezisztens változata SGC7901 /VCR (létre és tartják fenn a laboratóriumunkban a korábban leírt [11]) RPMI-1640 tápközegben, amelyet 10% magzati borjú szérummal és 100 egység penicillint és 100 ng /ml sztreptomicinnel (Invitrogen ). Ahhoz, hogy a MDR-fenotípus, vinkrisztin (a végső koncentráció 1 ng /ml) adtunk a táptalajhoz a SGC7901 /VCR sejtek. Generálni stabil sejtvonal, lentivírusvektor GV260-hNIS /Fluc vagy GV260-hNIS /Fluc-3xmir16 először kotranszfektálunk 293T sejteket csomagolás plazmidok ( gag, pol, VSV-g katalógusa). Növekedési tápközeget lecseréltük a 6 órával a transzfekció és lentivírus-tartalmú felülúszót összegyűjtöttük 48 óra post-transzfekció. A begyűjtött felülúszót centrifugáltuk 4000 g-n 10 percig a sejttörmelék. A koncentrált vírust titráltuk 293T-sejtek. SGC7901 sejtek és SGC7901 /VCR sejtek transzdukált GV260-hNIS /Fluc és GV260-hNIS /Fluc-3xmir16 vírus rendre fertőzési multiplicitással (MOI) 10. Ezután a sejteket szűrtünk puromicin 3 hét és sejtklónokat összegyűjtött bővült a következő lépésben kísérletet. katalógusa

RNS oligo és transzfekciós katalógusa

a miRNS-16 és a negatív kontroll (NC) RNS oligonukleotidokat szintetizált (Shanghai GenePharma, Kína) az alábbi szekvenciák:

miRNS-16 értelemben: 5'-UAGCAGCACGUAAAUAUUGGCG-3 'katalógusa

miRNS-16 anti-ész: 5'-CGCCAAUAUUUACGU-GCUGCUA-3' katalógusa

NC értelme: 5 '-UUGUACUACACAAAAGUACUG-3'

NC anti-sense: 5'-CAGUACUUUUGUGUAGUACAA-3 '

transzfekció előtt SGCC7901 sejteket ültettünk 1 × 10 5 sejt lyukanként egy 24 mélyedéses lemezen, és növekedni 24 órán át. A transzfektálást végeztünk Lipofectamine 2000 reagenssel (Invitrogen) alkalmazásával a gyártó protokollja. Minden transzfekció végeztünk három példányban.

Kvantitatív valós idejű PCR (QRT-PCR) elemzéssel

Teljes RNS-t izolálunk a tenyésztett sejtekből Trizol (Invitrogen). RT végeztük PrimerScript RT Regent reagenskészlet (Takara, Japán) és qPCR végeztük Fast SYBR Green Master Mix (Applied Biosystems, Foster City, CA) és ABI StepOne plusz a valós idejű PCR System (Applied Biosystems) alkalmazásával a gyártó protokollja . A PCR-termékeket elemeztük 3% -os agaróz gélen. A relatív mennyisége miRNS-16 normalizáltuk U6 snRNS. És a relatív mennyisége Fluc normalizáltuk GAPDH-gén. A kihajtható változás miRNS-16 vagy Fluc gén kísérleti csoportban a kontrollcsoporthoz képest csoport kiszámítása a 2 -ΔΔCt módszer, ahol ΔΔCt = ΔCt kísérlet - ΔCt szabályozás és ΔCt = Ct miRNS - Ct U6 vagy ΔCt = ct Fluc - ct GAPDH. A PCR-t három párhuzamosban végeztük. A használt primerek szár-hurok RT-PCR miR-16 szerepelnek a következők:

U6 Fw: 5'-GCTTCGGCAGCACATATACTAAAAT-3 '

U6 Rev: 5'-CGCTTCACGAATTTGCGTGTCAT-3 "katalógusa

miR-16 RT 5'-GTCGTATCCAGTGCGTGTCGTGGAGTCGGCAATTGCACTGG-ATACGACCGCCAAT-3 'katalógusa

miR-16 Fw: 5'-TAGCAGCACGTAAATATTGGCG-3' katalógusa

miR-16 Rev: 5 "-TGCGTGTCGTGGAGTC-3 'katalógusa

Fluc-Fw: 5'-GGTCCTATGATTATGTCCGGTTATG-3' katalógusa

Fluc-Rev: 5'-ATGTAGCCATCCATCCTTGTCAAT-3 'katalógusa

GAPDH-Fw: 5'-GGTCTCCTCTGACTTCAACA-3 '

GAPDH-Rev: 5'-AGCCAAATTCGTTGTCATAC-3'

Western-blot-analízis

SGC7901 sejteket háromszor mostuk PBS-sel, majd lizáltuk hideg lízis-pufferben (20 mM NaCl, 200 mM Tris-HCI [pH 7,4], 1 mM fenil-metil-fluorid, 1% Triton X-100 és 1% aprotinin) 30 percig, jégen. A sejtlizátumokat majd centrifugáltuk 12.000 rpm-en 15 percen át 4 ° C hőmérsékleten. A felülúszót összegyűjtöttük, és azonos mennyiségű fehérje volt megoldani 8% SDS-PAGE, majd nitrocellulóz membránra transzferáltuk. A membránokat inkubáltuk blokkoló oldattal, ami 5% BSA-t 1 órán át szobahőmérsékleten keverjük, majd a immunblottoltuk a jelzett antitestekkel. Az immunreaktív sávokat tettük láthatóvá egy kemilumineszcencia készlet (Amersham Pharmacia Corp., Piscataway, NJ). Katalógusa

MTT assay katalógusa

Annak megállapításához, a növekedési ráta az NF-üres, az NF-3xmir16 és NF-3xmir16 /VCR sejtek, e három sejtet oltunk 96 mérőhelyes lemezeken az azonos számok (5000 sejt) lyukanként. Különböző időpontokban (24, 48, 72, 96 óra), 25 ul 5,0 mg /ml steril szűrt 3- (4, 5-dimetil-tiazol-2-il) -2, 5-difenil-tetrazólium-bromidot (MTT; Sigma) adunk az egyes lyukakhoz. A reagálatlan színezéket eltávolítottuk 4 óra elteltével inkubálás és az oldhatatlan formazán kristályokat feloldjuk 100 ul dimetil-szulfoxidban (DMSO). Az abszorbanciát 570 nm-en (referencia hullámhossz 630 nm) mértük Synergy II multimódusú mikrotiterlemez-leolvasó (BioTech Instruments, VT).

Radioaktív jodid felvételi vizsgálatot

azonosítani közötti kapcsolat jodid felvétel és a sejtek számát, egy hígítási sort sejtet oltunk 24 mérőhelyes lemezekre. A 12 órás inkubálás a 131 felvétel szintjét vizsgálták. A jodid felvételét oly módon határoztuk meg a sejteket 500 ul Hanks-féle kiegyensúlyozott sóoldat (HBSS), amely 0,5% szarvasmarha szérum albumin 37 kBq hordozó-mentes Na 131I és 10 mM nátrium-jodidot, 30 percig. Az inkubálás után a sejteket kétszer mostuk a lehető leggyorsabban 1 ml jéghideg HBSS-pufferben. A sejteket leválasztottuk 200 pl tripszin, és a radioaktivitást mértük egy γ-számlálóval (Perkin-Elmer). Ahhoz, hogy értékelje a funkcionális expresszióját hNIS a riporter gén rendszerben, az NF-3xmir16 sejteket szélesztettünk 1 × 10 5 sejt lyukanként egy 24 lyukú lemezen a nap a transzfekció előtt, akkor miRNS-16 és az NC oligo transzfektáltunk . 24 órával később, a jodid felvételét mértük a fent leírtak szerint.

In vitro
biolumineszcencia képalkotó vizsgálat

azonosítani közötti kapcsolat lumineszcencia jeleket és a sejtek számát, egy hígítási sorozat a sejtet oltunk 24 mérőhelyes lemezekre. 12 óra elteltével inkubálás mindegyik jól mossuk foszfáttal beffered sóoldattal (PBS). Ezután D-luciferint (Xenogen) koncentrációban 0,5 mmol /l adtunk közvetlenül a vizsgálat előtt. Biolumineszcens megmértük egy IVIS 100 Imaging rendszer (Xenogen), és vizsgáljuk a Living kép szoftververziót 2,50 (Xenogen). Ahhoz, hogy értékelje a funkcionális expresszióját Fluc a riporter gén rendszerben, az NF-3xmir16 sejteket szélesztettünk 1 × 10 5 sejt lyukanként egy 24 lyukú lemezen a nap a transzfekció előtt, akkor miRNS-16 és az NC oligo transzfektáltunk . 24 órával később, a biolumineszcenciavizsgálat mértük a fent leírtak szerint.

biolumineszcens és A 99mTc-pertechnetát képalkotó nude egerekben

Egyenlő számok (5 × 10 6 sejt) NF-üres, és az NF-3xmir16, vagy az NF-3xmir16 /VCR és az NF-3xmir16 sejtek voltak-xenograftot hordozó, szubkután a bal és jobb hátsó horpaszában csupasz egerekbe feltüntetett eredményeket. Foszforeszkáló képalkotó szerezte egy nappal a sejtek befecskendezése után. Minden egereket elaltattuk 2,5% izoflurán gáz oxigén áramlási sebesség 1,5 l /min. Vizes oldatát a D-luciferine (150 mg /testtömeg-kg) injektáltunk perkután előtt 10 perccel képalkotás. Az egésztest-képek Fluc jelek szerezték 2 percig élő kép szoftver (Xenogen) futott, így bioluminescent képeket. A ROI-t a kiválasztott manuálisan a jel intenzitását. Biolumineszcens jeleket fejezzük fotonok másodpercenként köbcentiméter per szteradiánban (p /sec /cm 2 /sr) belül a ROI. Katalógusa

A nukleáris képalkotás, a tumoros egerek intraperitoneálisan 18,5 MBq a 99mTc-pertechnetát a 2weeks sejtek befecskendezése után. Injekció után 30 percig, az állatot helyeztük egy szórt fekvő helyzetben az ágyon a SPECT szkenner (Symbia T2, Siemens). Altatás végeztük 1% -2% isoflurannak 100% O 2 befecskendezés során és képalkotó. Minden kép rekonstruálható egy 2 dimenziós megrendelt-részhalmazok elvárás maximum algoritmus. Aktivitás mennyiségi megtekintésével régiók (ROI) a tumorok és a terület a ROI állandó értéken tartottuk valamennyi nukleáris és optikai képeket. Miután biolumineszcens és A 99mTc-pertechnetát képalkotás, a tumorokat gyűjtöttünk és lemérjük.

Statisztikai analízis

Az eredményeket átlag ± SD. Mutató adatok összehasonlítására két csoport értékelte a Student-féle t-próba. Közötti összehasonlításokat több mint két csoport értékelni, varianciaanalízissel (ANOVA), a megfelelő posthoc tesztelés. P értékek < 0,05 statisztikailag szignifikánsnak tekintettük. Katalógusa

Eredmények katalógusa

létesítése gyomorrák stabilan expresszáló sejtvonalak hNIS és Fluc gének katalógusa

egy fúziós riporter gén (GV260- hNIS /Fluc említett, az NF-üres), a hNIS cDNS-t klónoztuk lentivírus vektorba (GV260-Fluc-Puro) kódoló Fluc gént, hogy létrehoz egy fúziós fehérje, amely ellenőrzése alatt ubiquitin promóter. Ezután három példányban komplementer szekvenciák ellen miRNS-16 (3xmir16) illesztettek stopkodon után a hNIS /Fluc fúziós gén létrehozásához egy másik konstrukciót (GV260-hNIS /Fluc-3xmir16 említett NF-3xmir16) (1A ábra). A rántotta nukleotid szekvenciáját hasonló hosszúságú 3xmir16 is beilleszteni 3'UTR a hNIS /Fluc fúziós gén, így a kontroll konstrukcióval (GV260-hNIS /Fluc-tülekedés említett NF-tülekedés). In vitro katalógusa biolumineszcenciával képalkotó azt mutatta, hogy Fluc gén tevékenységét NF-üres cellák hasonló volt származó NF-tülekedés sejtek (ábra S1A). Ezért úgy döntünk, az NF-üres konstrukció a további vizsgálat. Két sejtvonal egy MDR humán gyomorrák sejtvonal SGC7901 /VCR és a szülői sejtvonal SGC7901 voltak transzdukált a lentivírus tartalmazó NF-üres, vagy az NF-3xmir16 gén illetve létrehozni három stabil sejtvonalak NF-EMPTY /SGC7901, NF -3xmir16 /SGC7901 és NF-3xmir16 /SGC7901 /VCR (a NF-üres, az NF-3xmir16 és NF-3xmir16 /VCR). Először végeztünk MTT assay mérésére növekedési ráta a három sejtvonal (ábra S1B). Aztán perfomed qPCR vizsgálattal, hogy vizsgálja meg az integrált másolatait riporter-konstrukciók a három sejtvonal (ábra S1C). In vitro katalógusa biolumineszcenciával képalkotás (1B) és western blot (1C) tovább, hogy kimutatható a sikeres kifejezése Fluc és hNIS gének három sejtvonal. Katalógusa

A linearitás korrelációja Fluc és hNIS transzgén tevékenységek sejtszám in vitro Matton

értékelni Fluc és hNIS transzgén tevékenységek sejtekben végeztünk in vitro katalógusa biolumineszcencia képalkotás és 131 radiojód felvétel esszék egy hígítási sort az NF-3xmir16 sejtvonalakban. Amint az 1D ábra szerint növeli a sejtek számának, a felhalmozódása a lumineszcencia is növekedett. Biolumineszcens jeleket találtak jól korrelál a sejtek számát (γ 2 = 0,9990) (1 E. ábra). Eközben 131 felvételt is növekedett sejtszám (ábra 1F). A radiojód felvételét figyeltek jól korrelál (γ 2 = 0,9543) és a sejtek számát (ábra 1G). Mivel a Fluc fuzionáltuk hNIS, egy jól korreláció biolumineszcencia intenzitása és 131I radioaktivitás volt megfigyelhető szerinti sejtek a lineáris regressziós analízissel (γ 2 = 0,9339) (ábra 1H).

érvényesítése miRNS-16 tevékenységeket keresztül katalógusa riporter gén rendszer katalógusa

Annak tesztelésére, hogy az NF-3xmir16 riporter vektort tartalmazó miRNS-16 target szekvenciák elfojtott exogén miRNS-16, megvizsgáltuk a Fluc és hNIS tevékenység bevezetése után miRNS-16. Összehasonlítva a transzfektált sejtek NC oligonukleotidok, a biolumineszcencia jel arra 35% -kal csökkentek, a transzfektált sejtek miRNS-16 (ábra a 2A és 2B). A 131I radiojód felvételének miRNS-16 transzfektált sejtek megközelítőleg 70% -a, hogy az NC transzfektált sejtekben mennyiségileg radioaktív számlálással (2C ábra). És a Fluc és hNIS aktivitás csökkent dózisfüggő módon (ábra S1D-F). Ezek az adatok azt mutatták, hogy az NF-3xmir16 riporter konstrukcióval szabályozni lehetne a miRNS-16. Katalógusa

kimutatása endogén miRNS-16 expresszió in vitro katalógusa és in vivo katalógusa

detektálni az endogén miRNS-16 expressziós szintje a gyomorrák sejtek in vitro katalógusa, egyenlő számban (1 × 10 6) NF-üres és NF-3xmir16 sejteket oltottunk, majd a Fluc és hNIS aktivitást vizsgáltuk. Ábrán látható módon a 2D és 2E, Fluc aktivitás származó NF-3xmir16 sejtek csökkent mintegy 50% -kal az endogén miRNS-16 összehasonlítják a NF-üres cellák. És a hNIS aktivitást NF-3xmir16 sejtek is csökkent mintegy 40% -kal, válaszul az endogén miRNS-16 Ezzel szemben a származó NF-üres sejtek (ábra 2F). A hiányzó elfojtása Fluc vagy hNIS tevékenységet észleltek NF üres sejtek tekintetében, hogy nem voltak miRNS-16 célzott helyek NF-üres konstrukció. Katalógusa

A kettős képalkotó riporter gén rendszer lehetővé tette, vivo katalógusa megjelenítés endogén miRNS-16 expresszió gyomorrák sejtek. Egyenlő számok (1 × 10 7) az NF-üres, és az NF-3xmir16 sejteket xenograftot hordozó szubkután a bal és jobb hátsó oldalában a csupasz egerekbe (n = 6), majd biolumineszcens képalkotás és A 99mTc-pertechnetát gamma kamera képalkotó szerezték. Ábrán látható 2G, lumineszcencia intenzitását beültetett NF-3xmir16 sejtek mintegy 55% -kal alacsonyabb, mint amelyet az NF-üres cellák, hasonlóképpen a különbség a luciferáz tevékenységek mért in vitro katalógusa (2D, ábra és 2E). Miután a intraperitoneá 99mTc-pertechnetát 18,5 MBq, gamma kamera képalkotó végeztünk. Ezzel szemben a NF-üres daganatok, ami azt mutatta, kiemelkedő felvétel 99mTc-pertechnetát, NF-3xmir16 daganatok elhanyagolható volt felvétel (2H ábra), jelezve az endogén miRNS-16 csökkentette a hNIS kifejezést. A fiziológiás felvétel is megfigyelhető volt, a helyszínek a pajzsmirigy, gyomor és hólyag, amelyben hNIS normálisan expresszálódik. Régiók (ROI) elemzése azt mutatta, hogy hNIS aktivitás jelentősen csökkent NF-3xmir16 xenograftok képest, hogy az NF-üres átültetést hordoznak (2H ábra). Miután képalkotó gyűjtöttünk, és megmérjük a NF-üres és NF-3xmir16 daganatok (ábra S1G). Az eredmények azt mutatták, hogy ugyanaz volt a súlyokat, jelezte, hogy a különbségek jel intenzitása valóban endogén miRNS-16 funkció, de nem a sejtek számát. Katalógusa

Megjelenítés kifejezési változás a miRNS-16 MDR gyomorrák sejtek in vitro katalógusa és in vivo Matton

a kifejezés változás a miRNS-16 gyógyszer-rezisztens gyomorrák sejtek mutattunk keresztül katalógusa a Fluc és hNIS tevékenység biolumineszcencia képalkotás és 131 radiojód felvételét vizsgálatokban. Mindkét Fluc aktivitás (3A és 3B ábrák) és hNIS aktivitás (3C, ábra) nőtt mintegy 1,5-szeres az NF-3xmir16 /VCR sejtek képest, hogy az NF-3xmir16 sejtekben, amely azt sugallta, hogy a miRNS-16-ben downregulált az NF-3xmir16 /VCR sejtek. Annak ellenőrzésére, a kapott eredmények a riporter gén rendszer, kvantitatív RT-PCR (Q-PCR) végzett elemzés a differenciális expresszióját miRNS-16 ebben a két sejtvonal. Összhangban a riporter gén rendszer adatai, a Q-PCR kimutatta csökkent miRNS-16 szintek NF-3xmir16 /VCR képest a párja NF-3xmir16 sejtek (ábra 3D).

nem invazív mennyiségi ellenőrzése miRNA- 16 differenciális expressziót MDR gyomorrák sejtek vivo katalógusa, biolumineszcens képalkotás és 99mTc-pertechnetát gamma kamera képalkotó végeztünk. A biolumineszcens képalkotás bizonyította, hogy lumineszcencia jelek mintegy 1,7-szeresére növeli az NF-3xmir16 /VCR xenograftok versus NF-3xmir16 átültetést hordoznak (ábra 3E), összhangban növekszik a luciferáz aktivitást in vitro katalógusa (3A és 3B ábrák). Az injekciót 99mTc-pertechnetát és a megszerzése gamma kamera képalkotó jelezte, hogy jelentősen magasabb felhalmozási 99mTc-pertechnetát figyeltek NF-3xmir16 /VCR xenograftokkal mint az NF-3xmir16 vizsgálatára. Fiziológiai 99mTc-pertechnetát felhalmozódást is megfigyelhetők voltak a pajzsmirigy, hólyag és gyomor (3F ábrán). És az NF-3xmir16 és az NF-3xmir16 /VCR daganatokat azonos súlyú (ábra S1H). Katalógusa

VP-16 és az 5-FU túlszabályzását miRNS-16 expresszió kíméletesen képalkotása a kettős riporter gén rendszerben

Annak megállapításához, hogy más rákellenes gyógyszerek, amelyek megváltoztathatják miRNS-16 expressziós profillal, öt klinikai gyógyszerek gyomorrák adunk NF-3xmir16 sejtekbe, majd in vitro katalógusa biolumineszcencia képalkotás és 131 radiojód felvételét vizsgálatokban. Az eredmények azt mutatták, hogy a lumineszcencia intenzitás (4a ábra és a 4b), vagy a sejtek jodid felvétel (ábra 4E) nagymértékben csökkent kitettség VP-16, 5-FU és a CDDP, de nem MMC és az ADR kezelés képest, nem kezelt sejtekben.

az okok a csökkent jel megfigyelhető VP-16, 5-FU és CDDP kezelés lehet, hogy a kábítószer-aktivált endogén miRNS-16 expresszió vagy gátolt sejtek növekedését sőt okozta sejthalál. Ahhoz, hogy kizárják az utóbbi lehetőség, az öt gyógyszereket adunk NF-üres sejtek, amelyek nem tartalmaznak miRNS-16 cél helyek a konstrukciót. A in vitro
biolumineszcencia képalkotó eredmények igazolták, hogy a VP-16 és az 5-FU nem volt gátló hatása a lumineszcencia intenzitás, mivel a CDDP még mindig csökkentette a lumineszcens jel (4C és 4D), jelezve, hogy a CDDP gátolhatják a sejt növekedés, de nem aktiválja az endogén miRNS-16 expresszió. Másrészt, az MMC és ADR találtak kis mértékben növelni a lumineszcencia intenzitás mind az NF-3xmir16 és NF-üres cellák (4a ábra-D), amely származhat elősegítő sejtproliferáció.

Annak ellenőrzésére, hogy miRNS-16 aktiváló részt be rákellenes hatások VP-16 és az 5-FU, Q-PCR végeztünk annak meghatározására, a miRNS-16 szint NF-3xmir16 sejtek expozíció rákellenes gyógyszerek kezelések. Ennek megfelelően a miRNS-16 expresszió túlszabályozott után jelentősen VP-16, vagy 5-FU kezelések SGC7901 sejtek összehasonlítva a nem kezelt kontroll sejtek, míg az MMC, ADR és a CDDP volt csekély hatással miRNS-16 expresszió (4F).

fokozott miRNS-16 kifejezések által VP-16 és az 5-FU részt vesznek a p38 MAPK de az NF-kB jelátviteli útvonal

Hasonló a moduláció a fehérje-kódoló RNS-génekben, transzkripcióját miRNS gének úgy tűnik, hogy szabályozza több jelátviteli utak. Aktiválása az NF-kB vagy MAPK jelátviteli gyakori válasz a következő kemoterápiás szerek [17], [18]. Ezért azt feltételeztük, hogy fokozza a miRNS-16 lehet a megnövekedett NF-kB vagy MAPK aktiválást követően VP-16, vagy 5-FU kezeléssel. Ahhoz, hogy vizsgálhassuk a szerepét ezekre a jeltovábbítási útvonalakra VP-16 és az 5-FU által kiváltott transzaktiváló miRNS-16, először mért lumineszcencia intenzitás NF-3xmir16 sejtek válasz VP-16 és az 5-FU a jelenlétében vagy távollétében farmakológiai inhibitorok NF-kB vagy p38 MAPK. A kezelést a sejtek egy specifikus NF-kB inhibitor, Bay 11-7082, nem volt hatása a lumineszcens jel, mint a hatóanyaggal kezelt sejtek nélkül inhibitorok (ábra S2).

Ezzel szemben, a kezelés egy adott p38 MAPK-inhibitor, SB203850, markánsan mentettek csökkenése biolumineszcencia (ábra 5A és 5B) vagy jodid felvétel (5C) által VP-16 és 5-FU összehasonlítva a kezelt kontroll sejtek. Hogy megerősítsék a miRNS-16 expressziós szint jelenlétében SB203850, valós idejű PCR-t végeztünk, és az eredmények azt mutatták, hogy a gátló p38 MAPK drasztikusan elnyomott VP-16 és az 5-FU által kiváltott miRNS-16 upreguláció (5D ábra), jelezve, hogy a megnövekedett miRNS-16 expresszió VP-16 és az 5-FU részt vesz a p38 MAPK jelátviteli útvonal.

korábbi tanulmány kimutatta, hogy a Bcl-2-protein közvetlen célgént miRNS-16 a fejlesztés az MDR a SGC7901 gyomorrák-sejtek [11]. Annak tesztelésére, hogy a Bcl-2 szerepet játszik a VP-16 és 5-FU-stimulációja miRNS-16 keresztül
p38 MAPK útvonal, meghatároztuk a Bcl-2-protein szintjének Western-blot-analízis. Ábrán látható módon 5E és 5F, VP-16 és az 5-FU szignifikánsan csökkentette a Bcl-2-protein szint mintegy 50%, szemben a kezeletlen kontroll sejtek hiányában SB203850. Upon kezelés együtt SB203850, a csökkenés a Bcl-2-protein drasztikusan csökkentette, ami arra utal, hogy fontos a p38 MAPK aktiváció VP-16 és az 5-FU által kiváltott alulszabályozása Bcl-2-protein.

in vivo
monitorozása fokozott miRNS-16 expresszió VP-16 és az 5-FU

nem invazív monitorozása fokozott miRNS-16 expresszió által indukált VP-16 és az 5-FU, az NF-üres és az NF -3xmir16 sejteket ojtott a bal és jobb hátsó végtagi minden egér (n = 6), ill. Annak elkerülése érdekében, a biolumineszcencia jelet NF-üres zavarja, hogy származó NF-3xmir16 során gyógyszeres kezelés, különböző számú NF-üres (1 × 10 5 sejt), és az NF-3xmir16 (1 × 10 7 sejt) oltva. Amint a 6. ábrán látható, jelentősen csökkent biolumineszcencia intenzitás volt megfigyelhető az NF-3xmir16 xenograftok után VP-16, vagy 5-FU kezeléssel összehasonlítva a nontreatment. Különösen kezelt egerekben VP-16, a biolumineszcencia jel csökkent mintegy 40% -kal az NF-3xmir16 xenograftok mivel kissé nőtt az NF-üres xenograftok versus előkezelt képek (6a ábra és a 6B), hasonlóképpen a különbség lumineszcencia intenzitás okozott VP-16 in vitro katalógusa (4A-D).

Other Languages